Аннотация
Цель — проанализировать метод количественного определения кольцевой ковалентно-замкнутой ДНК ВГВ в пункционных биоптатах печени и оценить его значимость при идентификации HBsAg-негативного вирусного гепатита В. В работе были использованы образцы биопсийного материала ткани печени 128 больных, проживающих на территории Санкт-Петербурга, в различных регионах РФ, а также в Республике Узбекистан. Для количественного анализа кольцевой ковалентно-замкнутой ДНК ВГВ в биопсийном материале на базе методики выявления ккз ДНК ВГВ Pollicino T. и др. был разработан метод, основанный на ПЦР с детекцией в режиме реального времени с использованием TaqMan зондов для целевого фрагмента и для эндогенного референсного гена. При количественной оценке ккз ДНК ВГВ в ткани печени 18 больных ХВГВ умеренной активности с положительным результатом ПЦР ДНК ВГВ и 16 неактивных носителей HBsAg, содержание ккз ДНК ВГВ достоверно отличалось между группами (p<0,034) и в пересчете на 1 копию гена β-глобина у больных ХВГВ умеренной активности составило 1,71±1,32 копий/кл, а у неактивных носителей HBsAg 0,15±0,14 копий/кл. В группе больных с выраженным фиброзом и циррозом печени количество ккз ДНК ВГВ в ткани печени у пациентов с ХВГВ составило в среднем 2,5±0,4 копии/клетку, у пациентов с ХВГВ + Д в среднем 0,7±0,25 копий/клетку, у пациентов с коинфекцией ВГС + ВГВ 0,45±0,07 копий/клетку, у пациентов с предварительным диагнозом ХВГС в среднем 0,12±0,04 копий/клетку, у пациентов с криптогенным гепатитом 0,2±0,05 копии/клетку. Показано значимое отличие между группой больных ХВГВ с выраженным фиброзом и циррозом печени со всеми группами пациентов, кроме группы из 18 больных ХВГВ умеренной активности. Значения t-критерия Стьюдента при сравнении с остальными группами составили соответственно: для пациентов с предварительным диагнозом ХВГС t=5,92 p<0,05 f = 19, пациентов с криптогенным гепатитом t=5,71 p<0,05 f = 18, с «неактивным носительством HBsAg» t=5,55 p<0,05 f = 29, с коинфекциями ВГС + ВГВ t=5,05 p<0,05 f = 15 и ХВГВ + Д t=3,82 p<0,05 f = 17. Метод количественной оценки кольцевой ковалентно-замкнутой ДНК ВГВ в пункционных биоптатах печени позволяет идентифицировать HBsAg-негативную форму хронического вирусного гепатита В, а также отражает активность репликации вируса, что, в свою очередь, дает возможность предполагать дальнейшее прогрессирование заболевания и оценивать эффективности антивирусной терапии.
Список литературы
Global, regional, and national age-sex specific all-cause and cause-specific mortality for 240 causes of death, 1990-2013: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2013 GBD 2013 Mortality and Causes of Death Collaborators. Lancet. 2015; 385(9963): 117-71.
Gish R.G., Given B.D., Lai C.L., Locarnini S.A., Lau J.Y., Lewis D.L. Chronic hepatitis B: virology, natural history, current management and a glimpse at future opportunities. Antiviral research. 2015; 121: 47-58.
Raimondo G., Allain J. P., Brunetto M. R., Buendia M. A., Chen D. S., Colombo M. et al. Statements from the Taormina expert meeting on occult hepatitis B virus infection. J. Hepatol. 2008; 49: 652-7.
Pollicino T., Raffa G., Costantino L., Lisa A., Campello C., Squadrito G. et al. Molecular and functional analysis of occult hepatitis B virus isolates from patients with hepatocellular carcinoma. Hepatology. 2007; 45: 277-85.
Torbenson M., Thomas D.L. Occult hepatitis B. Lancet Infect. Dis. 2002; 2: 479-86.
Останкова Ю.В., Семенов А.В., Буркитбаемв Ж.Л., Савчук Т.Н., Тотолян Арег А. Результаты генотипирования вируса гепатита В у HBsAg-негативных доноров крови в г. Астана, Казахстан. Инфекция и иммунитет. 2017; 7(4): 383-92
Buti M., Rodriguez-Frias F., Jardi R., Esteban R. Hepatitis B virus genome variability and disease progression: the impact of pre-core mutants and HBV genotypes. J. Clin. Virol. 2005; 34(1): S79-S82.
Lin C.-L., Kao J.-H. Hepatitis B Virus Genotypes and Variants. Cold Spring Harb. Perspect. Med. 2015; 5(5): a021436-a021436.
Cullen B.R. Nuclear RNA export pathways. Mol. Cell. Biol. 2000; 20(12): 4181-7.
Huang Z.M., Yen T. S. Role of the hepatitis B virus posttranscriptional regulatory element in export of intronless transcripts. Mol. Cell. Biol. 1995; 15(7): 3864-9.
Smith G.J., Donello J. E., Lück R., Steger G., Hope T. J. The hepatitis B virus post-transcriptional regulatory element contains two conserved RNA stem-loops which are required for function. Nucleic Acids Res. 1998; 26(21): 4818-27.
Guo J.T., Guo H. Metabolism and function of hepatitis B virus cccDNA: Implications for the development of cccDNA-targeting antiviral therapeutics. Antiviral research. 2015; 122: 91-100.
Raffa G., Maimone S., Cargnel A., Santantonio T., Antonucci G., Massari M. et al. Analysis of occult hepatitis B virus infection in liver tissue of HIV patients with chronic hepatitis C. AIDS. 2007; 21: 2171-5.
Dandri M., Locarnini S. New insight in the pathobiology of hepatitis B virus infection. Gut. 2012; 61(1): i6-i17.
Цинзерлинг В.А., Эсауленко Е.В., Карев В.Е., Бубочкин А.Б., Сухорук А.А., Шибаева Е.О. Клинико-морфологические сопоставления при оккультном гепатите B. Архив патологии. 2017; 79(6): 8-13
Penna A., Artini M., Cavalli A., Levrero M., Bertoletti A., Pilli M. et al. Long-lasting memory T cell responses following self-limited acute hepatitis B. J. Clin. Invest. 1996; 98: 1185-94.
Song G.W., Ahn C.S., Lee S.G., Hwang S., Kim K.H., Moon D.B. et al. Correlation between risk of hepatitis B virus recurrence and tissue expression of covalently closed circular DNA in living donor liver transplant recipients treated with high-dose hepatitis B immunoglobulin. Transplant Proc. 2014; 46(10): 3548-53.
Pollicino T., Squadrito G., Cerenzia G., Cacciola I., Raffa G., Craxi A. et al. Hepatitis B virus maintains its pro-oncogenic properties in the case of occult HBV infection. Gastroenterology. 2004; 126(1): 102-10.
Gane E.J. Future anti-HBV strategies. Liver Int. 2017; 37 (Sup.1): 40-4.
Габдрахманов И.А., Семенов А.В., Останкова Ю.В., Козлов К.В, Жданов К.В., Гусев Д.А. и др. Взаимосвязи вирусологических и морфологических показателей в фазах иммунного контроля и реактивации у больных хроническим гепатитом В. Журнал инфектологии. 2015; 7(4): 37-43
Li W., Zhao J., Zou Z., Liu Y., Li B., Sun Y. et al. Analysis of hepatitis B virus intrahepatic covalently closed circular DNA and serum viral markers in treatment-naive patients with acute and chronic HBV infection. PLoS One. 2014; 9(2):e89046.
Levrero M., Pollicino T., Petersen J., Belloni L., Raimondo G., Dandri M. Control of cccDNA function in hepatitis B virus infection. J. Hepatol. 2009; 51: 581-92.
Wang Q., Fiel M.I., Luan W., Blank S., Kadri H., Kim K.W. et al. Impact of intrahepatic hepatitis B DNA and covalently closed circular DNA on survival after hepatectomy in HBV-associated hepatocellular carcinoma patients. Ann. Surg. Oncol. 2013; 20(12): 3761-70.
Бацких С.Н., Винницкая Е.В., Сбикина Е.С., Борунова Ж.В., Филиппов С.А., Сандлер Ю.Г. Латентная форма гепатита Вубольной с циррозом печени и первичным билиарным холангитом. Доктор.Ру. 2018; 7 (151): 30-4
Liu F., Campagna M., Qi Y., Zhao X., Guo F., Xu C. et al. Alpha-interferon suppresses hepadnavirus transcription by altering epigenetic modification of cccDNA minichromosomes. PLoS pathogens. 2013; 9(9): 3613.
Pollicino T., Belloni L., Raffa G., Pediconi N., Squadrito G., Raimondo G. et al. Hepatitis B virus replication is regulated by the acetylation status of hepatitis B virus cccDNA-bound H3 and H4 histones. Gastroenterology. 2006; 130(3): 823-37.
Shi L., Li S., Shen F., Li H., Qian S., Lee D.H. et al. Characterization of nucleosome positioning in hepadnaviral covalently closed circular DNA minichromosomes. Journal of virology. 2012; 86(18): 10059-69.
Königer C., Wingert I., Marsmann M., Rösler C., Beck J., Nassal M. Involvement of the host DNA-repair enzyme TDP2 in formation of the covalently closed circular DNA persistence reservoir of hepatitis B viruses. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2014; 111(40): E4244-53.
Kim J.W., Lee S.H., Park Y.S., Hwang J.H., Jeong S.H., Kim N. et al. Replicative activity of hepatitis B virus is negatively associated with methylation of covalently closed circular DNA in advanced hepatitis B virus infection. Intervirology. 2011; 54(6): 316-25.
Zhang Y., Li C., Zhang Y., Zhu H., Kang Y., Liu H. et al. Comparative analysis of CpG islands among ВГВ genotypes. PloS one. 2013; 8(2): 56711.
Костюшев Д.С., Зуева А.П., Брезгин С.А., Липатников А.Д., Волчкова Е.В., Малеев В.В. и др. Роль днк-метилтрансфераз в жизненном цикле вируса гепатита B и патогенезе хронического гепатита B. Вопросы вирусологии. 2018; 63(1): 19-29