Аннотация
Изучена антибактериальная активность in vitro 11 коммерческих препаратов дезинфектантов и 8 антисептиков против 10 штаммов бактерий Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumannii, Enterobacter cloaceae, Providencia stuartii, полученных из международных коллекций и выделенных от пациентов нейрореанимации г. Москвы в 2018-2019 годах. Чувствительность планктонных культур к препаратам определяли методом серийных разведений в бульоне и спот-методом на плотных питательных средах, чувствительность биоплёнок — методом аппликаторов. Выявлена общая закономерность: уровень чувствительности к тестируемым дезсредствам у клинических штаммов ниже, чем у референс-штаммов. Дезинфектанты «Микробак-Форте», «САТ-22», «Необак-Окси» эффективны против бактерий всех тест-штаммов, как в планктонном состоянии, так и в виде биоплёнок. Препараты дезинфектантов «Биодез-Оптима», «Биодез-Экстра ДВУ», «Новодез-Актив», «Триосепт-Окси», «Тристел Фьюз для поверхностей», «Эффект-Форте плюс», «Лактик-Окси» не обладают достаточной эффективностью в концентрациях, используемых в отделении нейрореанимации, поэтому предлагается использовать эти препараты в более высоких концентрациях. Выявлено, что дезсредство «Биодез-Экстра ДВУ» способно подавлять рост биоплёнок K. pneumoniae. Для дезсредства «Тристел Фьюз для поверхностей» выявлена способность подавлять рост биоплёнок K. pneumoniae, A. baumannii, P. aeruginosa. Бактерии всех использованных тест-штаммов в планктонном состоянии чувствительны ко всем тестируемым препаратам антисептиков. Биоплёнки клинических штаммов P. aeruginosa и P. stuartii обладают устойчивостью к антисептикам «Октенидол», «Октенисепт», «Мирамистин», «Гексорал» Проведённые исследования указывают на необходимость анализа чувствительности к антибактериальным препаратам у госпитальных патогенов, включая моделирование бактериальных биоплёнок, что является актуальным и важным научным направлением, необходимым для совершенствования контроля ИСМП в РФ.
Список литературы
Donlan R. M. Costerton W. Biofilms: Survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. Clinical Microbiology Reviews. 2002. 15(2): 167-93.
Kadam S., Shai S., Shahane A., Kaushikю K. S. Recent advances in non-conventional antimicrobial approaches for chronic wound biofilms: Have we found the ‘chink in the armor’? Biomedicines. 2019; 7(2): 35.
Malone M., Goeres D.M., Gosbell I., Vickery K., Jensen S., Stoodley P. Approaches to biofilm-associated infections: the need for standardized and relevant biofilm methods for clinical applications. Expert Rev. Anti Infect.Ther. 2017; 15(2):147-56.
Percival S. L., Vuotto C., Donelli G., Lipsky B. A. Biofilms and wounds: an identification algorithm and potential treatment options. Adv Wound Care (New Rochelle). 2015; 4(7): 389-97.
Sanchez-Vizuete P., Orgaz B., Aymerich S., Coq D. Le, Briandet R. Pathogens protection against the action of disinfectants in multispecies biofilms. Front Microbiol. 2015; 6: 705.
Di Lodovico S., Cataldi V., Di Campli E., Ancarani E., Cellini L., Di Giulio M. Enterococcus hirae biofilm formation on hospital material surfaces and effect of new biocides. Environ Health Prev Med. 2017; 22: 63.
Shen Y., Huang C., Monroy G. L., Janjaroen D., Derlon N., Lin J. et al. Response of simulated drinking water biofilm mechanical and structural properties to long-term disinfectant exposure. Environ Sci Technol. 2016; 50(4): 1779-87.
Oxaran V., Dittmann K. K., Lee S. H. I., Chaul L. T., Oliveira C. A. F. Corassin С.Н., Alves V. F., Pereira De Martinis E. C., Gram L. Behavior of foodborne pathogens Listeria monocytogenes and Staphylococcus aureus in mixed-species biofilms exposed to biocides. Appl. Environ Microbiol. 2018; 84(24): e02038-18.
Davis S. C., Ricotti C., Cazzaniga A., Welsh E., Eaglstein W. H., Mertz P. M. Microscopic and physiologic evidence for biofilm-associated wound colonization in vivo. Wound Repair Regen. 2008;16(1): 23-9.
Cooper I. R., Mahenthiralingam J., Hanlon G W. Long-term persistence of a single Legionella pneumophila strain possessing the mip gene in a municipal shower despite repeated cycles of chlorination. J. Hosp. Infect, 70: 154-9.
Зверьков А. В., Зузова А. П. Хлоргексидин: прошлое, настоящее и будущее одного из основных антисептиков. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2013; 15(4): 279-85.
Шкарин В. В. Благонравова А. С., Ковалишена О. В. Современные представления о механизмах устойчивости микроорганизмов к дезинфицирующим средствам. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы. 2011; 3: 48-53.
Denyer S.P, Stewart G.S.A.B. Mechanisms of action of disinfectants. Int. Biodeter Biodegrad. 1998;41:261-8
Осипова В. Л. Дезинфекция: Учебное пособие. Москва: ГЭОТАР-Медиа; 2009
Bardossy A. C., Zervos J., Zervos M. Preventing hospital-acquired infections in low-income and middle-income countries: impact, gaps, and opportunities. Infect. Dis. Clin. North. Am. 2016; 30(3):805-18.
Lev A. I., Astashkin E. I., Kislichkina A. A., Solovieva E. V., Kombarova T. I., Korobova O. V. et al. Comparative analysis of Klebsiella pneumoniae strains isolated in 2012-2016 that differ by antibiotic resistance genes and virulence genes profiles. Pathog. Glob. Health. 2018; 112 (3):142-51.
Dyatlov I., Astashkin E., Kartsev N., Ershova O., Svetoch E., Firstova V., Fursova N. Novel blaCTX-M-2-type gene coding extended spectrum beta-lactamase CTX-M-115 discovered in nosocomial Acinetobacter baumannii isolates in Russia. In: Multidisciplinary Approaches for Studying and Combating Microbial Pathogens Formatex Research Center. Boca Raton, Florida, USA: Brown Walker Press; 2015.
O’Toole G.A. Kolter R. Initiation of biofilm formation in Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signalling pathways: a genetic analysis. Mol. Microbiol. 1998; 28(3): 449-61.
Rodrigues L.B., Dos Santos L.R., Tagliari V.Z., Rizzo N.N., Trenhago G., de Oliveira A.P., Goetz F., do Nascimento V.P. Quantification of biofilm production on polystyrene by Listeria, Escherichia coli and Staphylococcus aureus isolated from a poultry slaughterhouse. Braz. J. Microbiol. 2010; 41(4): 1082-5.
Детушева Е. В., Родин В. Б., Слукин П. В., Чугунов В. А., Ершова О. Н., Александрова И. А. и др. Чувствительность нозокомиальных штаммов Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumannii и Proteus mirabilis к антисептику на основе хлоргексидина. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2015; 17(1): 57-66
Flemming H.C., Wingender J. The biofilm matrix. Nat. Rev. Microbiol. 2010; 8:632-3.
Flemming H. C., Wingender J., Szewzyk U., Steinberg P., Rice S. A., Kjelleberg S. Biofilms: an emergent form of bacterial life. Nat. Rev. Microbiol. 2016;14: 563-75.
Król J. E., Hall D. C., Balashov S., Pastor S., Sibert J., McCaffrey J., Lang S., Ehrlich R. L., Earl J, Mell J. C., Xiao M., Ehrlich G. D. Genome rearrangements induce biofilm formation in Escherichia coli C — an old model organism with a new application in biofilm research. BMC Genomics. 2019; 20(1): 767.
Ghigo J.M. Natural conjugative plasmids induce bacterial biofilm development. Nature. 2001; 412(6845): 442-5.
Mayaсk L. A., Sоraссо R. J., Wilde E. W. Comparative effectiveness of chlorine and chlorine dioxide biocide régimes for biofouling control. Water Research. 1984; 18(5): 593-9.
Петренко Н. Ф., Мокиенко А. В. Диоксид хлора как средство устранения биоплёнок. Вісник Одеської державної академії будівництва та архітектури. 2005;19: 58-63.
Мокиенко А. В., Петренко Н.Ф., Гоженко А.И. Обеззараживания воды. Гигиенические и медико-экологические аспекты. Т. 2. Диоксид хлора. Одесса: ТЭС; 2012.
Exner M., Kramer A., Lajoie L. Prevention and control of health care — associated waterborne infections in health care facilities. Am. J. Infect. Control. 2005; 33: 26-40