АЛГОРИТМ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ ПАРВОВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ В ГРУППАХ РИСКА

Аннотация

Парвовирусная инфекция (ПВИ) широко распространена, характеризуется воздушно-капельным, гемотрансмиссивным и вертикальным путями передачи. Парвовирус B19 (PVB19) проявляет тропность к быстроделящимся клетками эритропоэтического ряда. По принципу повышенной вероятности инфицирования PVB19 и серьёзности последствий, к группе повышенного риска относятся иммуннокомпрометированные лица, особенно с гематологическими проявлениями заболеваний. На основании результатов собственных исследований и анализа данных литературы предложены алгоритмы лабораторного обследования на ПВИ в отдельных группах риска с учётом особенностей развития и проявления ПВИ в каждой группе: у ВИЧ инфицированных, у больных онкогематологического профиля, которым показана аллогенная трансплантация гемопоэтических стволовых клеток (алло-ТГСК) (реципиенты крови и костного мозга), у больных с хроническими анемиями паразитарной этиологии. Для каждой группы определён основной клинический или лабораторный показатель, медицинская процедура или физиологическая характеристика больного, исходя из которых исследование на ПВИ является целесообразным. Для ВИЧ-инфицированных пациентов основным критерием обследования на ПВИ является стойкая анемия. Для пациентов онкогематологического профиля основанием для обследования на ПВИ является процедура алло-ТГСК, которая планируется или проводится данному больному. Для больных малярией — возраст больного, так как именно у детей младшего возраста коинфицирование малярийным плазмодием и парвовирусом В19 может явиться фатальным. Использование предложенных алгоритмов диагностики ПВИ в группах риска может способствовать выявлению причин неблагоприятного развития основного заболевания, связанных с инфицированием PVB19, и своевременной коррекции применяемой терапии.

Об авторах

Список литературы

Satake M., Hoshi Y., Taira R., Momose S.Y., Hino S., Tadokoro K. Symptomatic parvovirus B19 infection caused by blood component transfusion. Transfusion. 2011; 51(9): 1887-95.

Qiu J., Söderlund-Venermo M., Young N.S. Human Parvoviruses. Clin. Microbiol. Rev. 2017; 30(1): 43-113.

Тихонова Н.Т., Герасимова А.Г., Москалева Т.Н. Оценка распространения парвовирусной инфекции в Москве. Информационное письмо. Комитет здравоохранения г. Москвы. М.; 2004

Mor O., Ofir I., Pavel R., Bassal R., Kra-Oz Z., Cohen D. et al. Parvovirus B19V infection in Israel: prevalence and occurrence of acute infection between 2008 and 2013. Epidemiol. Infect. 2016; 144(1): 207-14.

Krishnan P., Ramadas P., Rajendran P.P., Madhavan P., Alex A., Jayaschandran V. et al. Effects of Parvovirus B19 Infection in Renal Transplant Recipients: A Retrospective Review of Three Cases.Int. J. Angiol. 2015; 24(2): 87-92.

Douvoyiannis M., Litman N., Goldman D.L. Neurologic manifestations associated with parvovirus B19 infection. Clin. Infect. Dis. 2009; 48: 1713-23.

Invernizzi R., Bastia R., Quaglia F. Pure red cell aplasia caused by parvovirus B19 in a heart transplant recipient. Clin. Case Rep. 2016; 4: 870-1.

Bihari C., Rastogi A., Saxena P., Rangegowda D., Chowdhury A., Gupta N. et al. Parvovirus b19 associated hepatitis. Hepat. Res. Treat. 2013. https://europepmc.org/article/pmc/3819764

Escher F., Modrow S., Sabi T., Kühl U., Lassner D., Schultheiss H.P. et al. Parvovirus B19 profiles in patients presenting with acute myocarditis and chronic dilated cardiomyopathy. Med. Sci. Monit. 2008; 14: 589-97.

Fritch Lilla S.A., Burgett S.E., McGann K.A., Wechsler D.S. Persistent and prolonged parvovirus B19 viremia in a pediatric patient with acute lymphoblastic leukemia. J. Pediatric Infect. Dis. Soc. 2015; 4: 38-40.

Marco H., Guermah I., Matas L., Hernández A., Navarro M., Lopez D. et al. Postinfectious glomerulonephritis secondary to erythrovirus B19 (Parvovirus B19): Case report and review of the literature. Clin. Nephrol. 2016; 85: 238-44.

Lundqvist A., Tolfvenstam T., Brytting M., Stolt C.M., Hedman K., Broliden K. Prevalence of parvovirus B19 DNA in bone marrow of patients with haematological disorders. Scand. J. Infect. Dis.1999; 31(2): 119-22.

Waldman M., Kopp J.B. Parvovirus B19 and the kidney. Clin. J. Am. Soc. Nephrol. 2007; 2: 47-56.

Rezaei F., Sarshari B., Ghavami N., Meysami P., Shadab A., Salimi H. et al. Prevalence and genotypic characterization of Human Parvovirus B19 in children with measles- and rubella-like illness in Iran. J. Med. Virol. 2016; 88(6): 947-53.

Gallinella G., Zuffi E., Gentilomi G., Manaresi E., Venturoli S., Bonvicini F. et al. Relevance of B19 markers in serum samples for a diagnosis of parvovirus B19-correlated diseases. J. Med. Virol. 2003; 71: 135-9.

Maple P.A., Hedman L., Dhanilall P., Kantola K., Nurmi V., Söderlund-Venermo M. et al. Identification of past and recent parvovirus B19 infection in immunocompetent individuals by quantitative PCR and enzyme immunoassays: a dual-laboratory study. J. Clin. Microbiol. 2014; 52: 947-56.

Хамитова И.В., Антипова А.Ю., Семёнов А.В., Лаврентьева И.Н. Лабораторные маркеры парвовирусной инфекции у лиц с вторичными иммунодефицитами. Материалы VIII Ежегодного Всероссийского Конгресса по инфекционным болезням с международным участием. Москва, 28-30 марта 2016 г. Инфекционные болезни. 2016; 14 (Приложение 1): 294

Khamitova I.V., Lavrentyeva I.N., Averyanova M.Yu., Chukhlovin A.B., Zubarovskaya L.S. et al. Parvovirus B19 incidence, specific antibody response, and delayed hematopoietic recovery after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Cellular Therapy and Transplantation. 2018; 7(1): 36-43

Лаврентьева И.Н., Хамитова И.В., Слита А.В., Левковский А.E., Диало А.А., Диало А.К., Соу Т.С., Найденова Е.В., Агафонов Д.А., Сеничкина А.М. Влияние коинфицирования PVB19 и Plasmodium Falciparum на течение и прогноз малярии. Инфекция и иммунитет. 2018; 8(3): 383-7.

Хамитова И.В., Лаврентьева И.Н., Левковский А.Е., Останкова Ю.В., Семенов А.В. Влияние коинфекцирования PVB19 и P. Falciparum на течение и прогноз малярии у детей Гвинейской Республики. Всероссийский ежегодный конгресс «Инфекционные болезни у детей: диагностика, лечение и профилактика» 11-12 октября 2018 г., Санкт-Петербург. Журнал инфектологии. 2018; 10(4) (Приложение 1): 138.

Abdollahi A., Shoar S., Sheikhbahaei S., Mahdaviani B., Rasoulinejad M. Status of immunity against PVB19 in HIV-infected patients according to CD4(+) cell count, and antiretroviral therapy regimen groups. Niger Med. J. 2014; 55(1): 20-3.

Pereira R.F., Garcia R. de C., Azevedo K.M., Setúbal S., Siqueira M.A., Oliveira S.A. Clinical features and laboratory findings of human parvovirus B19 in human immunodeficiency virus-infected patients. Memórias do Instituto Oswaldo Cruz. 2014; 109: 168-73.

Liu W., Ittmann M., Liu J, Schoentag R., Tierno P., Greco M.A. et al. Human parvovirus B19 in bone marrows from adults with acquired immunodeficiency syndrome: a comparative study using in situ hybridization and immunohistochemistry. Hum. Pathol. 1997; 28: 760-6.

Ramratnam B., Gollerkeri A., Schiffman F.J., Rintels P., Flanigan T.P. Management of persistent B19 parvovirus infection in AIDS. Br. J. Haematol. 1995; 91: 90-2.

Frickhofen N., Abkowitz J.L., Safford M., Berry J.M., Antunez-de-Mayolo J., Astrow A. et al. Persistent B19 parvovirus infection in patients infected with human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1): a treatable cause of anemia in AIDS. Ann.Intern. Med. 1990; 113: 926-33.

Chen M.Y., Hung C.C., Fang C.T., Hsieh S.M. Reconstituted immunity against persistent parvovirus B19 infection in a patient with acquired immunodeficiency syndrome after highly active antiretroviral therapy. Clin. Infect. Dis. 2001; 32: 1361-5.

Gosset C., Viglietti D., Hue K., Antoine C., Glotz D., Pillebout E. How many times can parvovirus B19-related anemia recur in solid organ transplant recipients? Transpl. Infect. Dis. 2012; 14(5): 64-70.

Würdinger M., Modrow S., Plentz A. Impact of Parvovirus B19 Viremia in Liver Transplanted Children on Anemia: A Retrospective Study. Viruses. 2017; 9(6): 149.

Scarlata F., Gianelli E., Miceli S., Galimberti L., Antinori S. Acute Parvovirus B19 Infection and Anemia during Plasmodium falciparum Malaria. Clin. Infectious Dis. 2002; 35(11): 1449-51.

Toan N.L., Sy B.T., Song L.H., Luong H.V., Binh N.T., Binh Vu.Q. et al. Co-infection of human parvovirus B19 with Plasmodium falciparum contributes to malaria disease severity in Gabonese patients. BMC Infect. Dis. 2013; 13: 375.

Agarwal R., Baid R., Datta R., Saha M., Sarkar N. Falciparum malaria and parvovirus B19 coinfection: A rare entity. Trop. Parasitol. 2017; 7(1): 47-8.

Wildig J., Michon P., Siba P, Mellombo M., Ura A., Mueller I. et al. Parvovirus B19 infection contributes to severe anemia in young children in Papua New Guinea. J. Infect. Dis. 2006; 194(2): 146-53.

Ho M., Webster H.K., Looareesuwan S., Supanaranond W., Phillips R.E., Chanthavanich P. et al. Antigen-specific immunosuppression in human malaria due to Plasmodium falciparum. J. Infect. Dis. 1986; 153: 763-71.

Duedu K.O., Sagoe K.W., Ayeh-Kumi P.F., Affrim R.B., Adiku T., Huat L.B. The effects of co-infection with human parvovirus B19 and Plasmodium falciparum on type and degree of anaemia in Ghanaian children. Asian Pac. J. Trop. Biomed. 2013; 3(2): 129-39.

Slutsker L., Taylor T.E., Wirima J.J., Steketee R.W. In-hospital morbidity and mortality due to malaria-associated severe anaemia in two areas of Malawi with different patterns of malaria infection. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. 1994; 88: 548-51.

Ключевые слова