Аннотация
Приведены результаты сравнительных испытаний разработанной в ФБУН ГНЦ ПМБ питательной среды «Агар Мюллера-Хинтон II — Оболенск» и контрольной питательной среды «Mueller Hinton II Agar» импортного производства при определении чувствительности к антимикробным препаратам (АМП) клинических штаммов бактерий с помощью диско-диффузионного метода и метода градиентной диффузии (Е-тесты), при оценке карбапенемазной активности штаммов, несущих гены карбапенемаз, в CIM-тесте. Использованы 173 охарактеризованных штамма бактерий видов: Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumannii, Proteus mirabilis, Serratia marcescens, Enterobacter aerogenes, Escherichia coli; Photorhabdus spp., Staphylococcus aureus, Enterococcus spp., в том числе на наличие генов карбапенемаз OXA — и NDM-типов у грамотрицательных бактерий. Показана высокая степень совпадения результатов определения чувствительности к антимикробным препаратам для двух питательных сред. Показатель согласования категорий чувствительности штаммов к АМП (S, I, R) составил 98,2% для диско-диффузионного метода, 94,4-100% — для методов Е-тестов и CIM-теста. В рамках Программы импортозамещения успешно разработана отечественная питательная среда «МХА II-Оболенск», удовлетворяющая требованиям ГОСТ Р ИСО 20776-2-2010 «Клинические лабораторные исследования и диагностические тест-системы in vitro. Исследование чувствительности инфекционных агентов и оценка функциональных характеристик изделий для исследования чувствительности к антимикробным средствам».
Список литературы
Jim O’Neill. Tackling drug-resistant infections globally: Final report and recommendations. London: The review on antimicrobial resistance. 2016. URL: https://amr-review.org/sites/default/files/160525_Final%20paper_with%20cover.pdf
Миронов А.Ю., Крапивина И.В., Мудрак Д.Е., Иванов Д.В. Молекулярные механизмы резистентности к β-лактамам патогенов внутрибольничных инфекций. Клиническая лабораторная диагностика. 2012; 1: 39-43
Veenemans J., Mouton J.W., Kluytmans J.A., Donnely R., Verhulst C., van Keulen P.H. Effect of manganese in test media on in vitro susceptibility of Enterobacteriaceae and Acinetobacter baumannii to tigecycline. Journal of Clinical Microbiology. 2012; 50(9): 3077-9.
Daly J. S., Dodge R. A., Glew R. H., Soja D. T., Deluca B. A., Hebert S. Effect of zinc concentration in Mueller-Hinton Agar on susceptibility of Pseudomonas aeruginosa to imipenem. Journal of Clinical Microbiology. 1997; 35(4): 1027-9.
Шепелин А.П., Морозова Т.П., Косилова И.С., Глазкова Г.П., Домотенко Л.В. Оценка качества питательных сред для определения чувствительности к антибактериальным препаратам. Дезинфекция. Антисептика. 2013; 1: 43-8.
Поляк М.С., Сухаревич В.И., Сухаревич М.Э. Питательные среды для медицинской микробиологии. СПб.: Издательство «ЭЛБИ-СПб»; 2008.
Song W., Kim H.-S., Kim J.-S., Kim H. S., Shin D. H., Shin S., Park M.-J. Carbapenem Inactivation Method: Accurate Detection and Easy Interpretation of Carbapenemase Production in Enterobacteriaceae and Pseudomonas spp. Ann. Clin. Microbiol. 2016; 19(4): 83-7.
Fursova N.K., Astashkin E.I., Knyazeva A.I., Kartsev N.N., Leonova E.S., Ershova O.N., Alexandrova I.A., Kurdyumova N.V., Sazikina S.Y., Volozhantsev N.V., Svetoch E.A., Dyatlov I.A. The spread of blaOXA-48 and blaOXA-244 carbapenemase genes among Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis and Enterobacter spp. isolated in Moscow, Russia. Ann. Clin. Microbiol. Antimicrob. 2015; 14(1): 46.
Dyatlov I., Astashkin E., Kartsev N., Ershova O., Svetoch E., Firstova V., Fursova N. Novel blaCTX-M-2-type gene coding extended spectrum beta-lactamase CTX-M-115 discovered in nosocomial Acinetobacter baumannii isolates in Russia. In: Multidisciplinary Approaches for Studying and Combating Microbial Pathogens. Ed. A. Mendez-Vilas. Brown Walker Press. Boca Raton, Florida, USA. 2015; 107-110. ISBN-10: 1-62734-544-2. ISBN-13: 978-1-62734-544-6.
Ageevets V.A., Partina I.V., Lisitsyna E.S., Ilina E.N., Lobzin Y.V., Shlyapnikov S.A., Sidorenko S.V. Emergence of carbapenemase-producing Gram-negative bacteria in Saint Petersburg, Russia. Int. J. Antimicrob. Agents. 2014; 44(2): 152-5.
Rodrigo-Troyano A., Sibila O. The respiratory threat posed by multidrug resistant Gram-negative bacteria. Respirology. 2017; 22: 1288-99.
Авдошин В.П., Макаров О.В., Киричек А.А. Photorhabdus asymbiotica — новый представитель грамотрицательной микрофлоры в инфекции мочевых путей. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: медицина. 2013; 4: 94-9
Costa S.C., Chavez C.V., Jubelin G. et al. Recent insight into the pathogenicity mechanisms of the emergent pathogen Photorhabdus asymbiotica. Journal Microbes and Infection. 2010; 12: 182-9.
Gerrard J., Waterfield N., Vohra R. et. al. Human infection with Photorhabdus asymbiotica: an emerging bacterial pathogen. Journal Microbes and Infection. 2004; 6: 229-37.
Gerrard J.G., McNevin S., Alfredson D. et al. Photorhabdus species: bioluminescent bacteria as1emerging human pathogens? Journal Emerging Infectious Diseases. 2003; 9: 251-4.
Peel M.M., Alfredson D.A., Gerrard J.G. et al. Isolation, identification, and molecular characterization of strains of Photorhabdus luminescens from infected humans in Australia. Journal of Clinical Microbiology. 1999; 37: 3647-53.
Weissfeld A.S., Halliday R.J., Simmons D.E. et al. Photorhabdus asymbiotica, a pathogen emerging on two continents that proves that there is no substitute for a well-trained clinical microbiologist. Journal of Clinical Microbiology. 2005; 43(8): 4152-55.
Киршева Н.А., Ганина Е.А., Комбарова Т.И., Шайхутдинова Р.З., Дентовская С.В, Анисимов А.П. Инфекционная чувствительность мышей линии BALB/c к заражению Photorhabdus asymbiotica и Photorhabdus temperate. Проблемы особо опасных инфекций. 2012; 3(113): 64-6