Аннотация
Изучена антимикробная активность антисептика диоксидина и комплексного диоксидин-содержащего препарата «Носолин-ультра, капли назальные» против планктонных и биоплёночных культур возбудителей ЛОР-инфекций, изучение динамики формирования микробной устойчивости к диоксидину. В работе использованы 11 референс-штаммов и 9 клинических штаммов микроорганизмов: Streptococcus spp., Staphylococcus spp., Micrococcus luteus, Haemophilus influenzae, Acinetobacter pittii, Klebsiella pneumoniae, Moraxella catarrhalis, Pseudomonas aeruginosa, Proteus vulgaris, Candida albicans. Антимикробную активность препаратов против планктонных культур определяли методом серийных разведений в бульоне и спот-методом на плотных питательных средах, против биоплёнок — методом аппликаторов. Динамику формирования устойчивости к диоксидину изучали, пассируя культуры в жидкой питательной среде с возрастающими концентрациями антисептика. Выявлено, что Диоксидин проявлял антимикробную активность против планктонных клеток всех штаммов (МБК=0,08-5 мг/мл), кроме S. pyogenes SN345 (МБК>5 мг/мл), подавлял рост сформированных биоплёнок (МБК=0,08-2,5 мг/мл) всех штаммов, кроме S. pyogenes SN345 (МБК>5 мг/мл). Препарат «Носолин-ультра, капли назальные» высокоактивен против планктонных клеток (МБК=0,04-0,63 мг/мл) и биоплёнок (МБК=0,02-0,31 мг/мл) грамотрицательных бактерий, кроме A. pittii (МБК>2,5 мг/мл), менее активен — против планктонных клеток (МБК=1,25-2,5 мг/мл) и биоплёнок (МБК=0,02-0,31 мг/мл) грамположительных бактерий и C. albicans. Один штамм (S. aureus) сформировал вариант, устойчивый к диоксидину в концентрации 20 мг/мл, что превысило концентрацию диоксидина в комплексном препарате, другие штаммы (P. aeruginosa, K. Pneumonia, C. albicans) таких вариантов не сформировали. Препарат «Носолин-ультра, капли назальные» может быть эффективно использован против большинства возбудителей ЛОР-инфекций. При длительном использовании препарата для некоторых видов ЛОР-патогенов в перспективе может быть отмечено незначительное снижение эффективности.
Список литературы
Афанасьева И.А. Комплексная терапия ОРВИ. Русский медицинский журнал. 2007; 15 (18): 1358-60.
Геппе Н.А., Дронов И.А., Малявина У.С. Рациональный подход к назначению и выбору антибактериальной терапии при инфекциях дыхательных путей и ЛОР-органов у детей. Клиническая фармакология. 2008; 1: 53-6.
Шишмаков А.А., Колесник Д.С., Толеуова Ж.Г.-К., Колоджиева В.В., Лебедева Е.А., Гончаров А.Е., и др. Эпидемиологическая оценка факторов риска распространения антибиотикорезистентных штаммов возбудителей инфекций верхних дыхательных путей и ЛОР-органов у детей. Пермский медицинский журнал. 2017; 34(4): 54-9.
Лучихин, Л.А., Миронов А.А., Гуров А.В. Медикаментозная терапия при тяжелых гнойно-воспалительных поражениях ЛОР-органов и их осложнениях. Вестник оториноларингологии. 2001; 4: 66-8.
Рязанцев С.В., Рябова М.А. ЛОР-инфекция вчера, сегодня, завтра. Эволюция возбудителей и прогресс терапии. Эффективная фармакотерапия. 2017; 30: 38-43.
Luk L.J., DelGaudio J.M. Topical Drug Therapies for Chronic Rhinosinusitis. Otolaryngol. Clin. North Am. 2017; 50(3): 533-43.
Chow A.W., Benninger M.S., Brook I., Brozek J.L., Goldstein E.J., Hicks L.A. et al. Infectious Diseases Society of America. Clin. Infect. Dis. 2012; 54(8): 72-112.
Russell M.D., Russell M.S. Urgent Infections of the Head and Neck. Med. Clin. North Am. 2018; 102(6):1109-20.
Liu Z., Norman G., Iheozor-Ejiofor Z., Wong J.K., Crosbie E.J., Wilson P. Nasal decontamination for the prevention of surgical site infection in Staphylococcus aureus carriers. Cochrane Database Syst. Rev. 2017; 5:CD012462.
Свистушкин В.М., Никифорова Г.Н., Петрова Е.И. Бактериальные инфекции ЛОР-органов: деликатная терапия. Медицинский совет. 2017; 8: 58-63.
Лопатин А.С. Местные антимикробные препараты в лечении инфекций верхних дыхательных путей. Клиническая антимикробная химиотерапия. 2000; 2(2): 58-61.
Cordesmeyer R., Kauffmann P., Markus T., Sömmer C., Eiffert H., Bremmer F., et al. Bacterial and histopathological findings in deep head and neck infections: a retrospective analysis. Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. 2017; 124(1):11-5
Туровский А.Б., Карюк Ю.А., Кондрашина В.В. Антибактериальная терапия инфекций ЛОР-органов. Клиницист. 2013; 3(4):98-103.
Федин А.В., Баранова Н.И., Дружинина Т.А., Починина Н.К. Иммунологические аспекты патогенеза острого бактериального риносинусита: выявление критериев хронизации процесса. Иммунопатология, аллергология, инфектология. 2014; 4:56-60.
Viveros N.M. Biofilms en otorrinolaringologia. Acta Otorrinolaringol. Esp. 2014; 65(1): 47-52
Еремин С.А., Рязанцев С.В., Коноплёв О.И. Рациональный выбор антибактериального препарата для терапии ЛОР-органов в амбулаторной практике. Медицинский совет. 2018; 20: 8-12.
Коваленко Н.И., Замазий Т.Н., Новикова И.В., Тараненко Г.П. Анализ антибиотикорезистентности возбудителей бактериальных инфекций ЛОР-органов. Проблемы здоровья и экологии. 2017; 53(3):31-5.
Сидоренко С.В., Никифорова Г.Н, Корнева О.В., Рязанцев С.В. Международные рекомендации по терапии ЛОР-инфекций: что применимо в российской действительности. Эффективная фармакотерапия. 2016; 20:28-36.
Calo L., Passali G.C., Galli J., Fadda G., Paludetti G. Role of biofilms in chronic inflammatory diseases of the upper airways. Adv. Otorhinolaryngol. 2011; 72: 93-6
Тулупов, Д. А., Карпова Е. П. О роли бактериальной микрофлоры в этиологии хронического аденоидита у детей. Вопросы современной педиатрии. 2014; 13(1): 172-5
Kanagalingam J., Feliciano R., Hah J.H., Labib H., Le T.A., Lin J.C. Practical use of povidone-iodine antiseptic in the maintenance of oral health and in the prevention and treatment of common oropharyngeal infections. Int. J. Clin. Pract. 2015; 69(1):1247-56.
Hathroubi S., Mekni M. A., Domenico P., Nguyen D., Jacques M. Biofilms: Microbial Shelters Against Antibiotics. Microb. Drug Resist. 2017; 23(2): 147-56.
Подкопаев Я.В, Домотенко Л.В., Морозова Т.П., Храмов М.В., Шепелин А.П. Отечественные питательные среды для диагностики гнойных бактериальных менингитов. Клиническая лабораторная диагностика. 2015; 5: 59-64
O’Toole G.A., Kolter R. Initiation of biofilm formation in Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signalling pathways: a genetic analysis. Mol. Microbiol. 1998; 28(3): 449-61.
Rodrigues L.B., Dos Santos L.R., Tagliari V.Z., Rizzo N.N., Trenhago G., de Oliveira A.P., Goetz F., do Nascimento V.P. Quantification of biofilm production on polystyrene by Listeria, Escherichia coli and Staphylococcus aureus isolated from a poultry slaughterhouse. Braz. J. Microbiol. 2010; 41(4): 1082-5.
Детушева Е.В., Родин В.Б., Слукин П.В., Чугунов В.А., Ершова О.Н., Александрова И.А. и др. Чувствительность нозокомиальных штаммов Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas aeruginosa, Acinetobacter baumannii и Proteus mirabilis к антисептику на основе хлоргексидина. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2015; 17(1): 57-66
Braoudaki M., Hilton A. C. Adaptive Resistance to Biocides in Salmonella enterica and Escherichia coli O157 and Cross-Resistance to Antimicrobial Agents. J. Clin. Microbiol. 2004; 42(1): 73-8.
Lev A.I., Astashkin E.I., Kislichkina A.A., Solovieva E.V., Kombarova T.I., Korobova O.V. et al. Comparative analysis of Klebsiella pneumoniae strains isolated in 2012-2016 that differ by antibiotic resistance genes and virulence genes profiles. Pathog. Glob. Health. 2018; 112 (3): 142-51.
Падейская Е.Н. Сложные вопросы антимикробной химиотерапии. Инфекционная и антимикробная терапия. 2017; 3(5): 31-6.
Яковлев В.П., Яковлева С.В. Руководство «Рациональная антимикробная фармакотерапия». Москва: Литтерра; 2015.
Козлов С.Н., Страчунский Л.С., Белоусова Ю.Б. Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии. Современная антимикробная химиотерапия. Руководство для врачей. Смоленск: Межрегиональная ассоциация по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии; 2007.
Плотников Ф.В. Комплексное лечение пациентов с гнойными ранами в зависимости от способности микроорганизмов-возбудителей формировать биопленку. Новости хирургии. 2014; 22(5): 575-81.