Аннотация
Цель работы – сравнительный анализ спектра и частот встречаемости аберрантных клеток в многослойном плоском неороговевающем эпителии и цилиндрическом эпителии шейки матки в постменопаузе у здоровых женщин и женщин с диагнозом «атрофический кольпит».
Материал и методы. Обследованы 41 женщина в возрасте 60-65 лет в постменопаузе. В 1-ю группу вошли 20 здоровых женщин, во 2-ю — 21 женщина с диагнозом «N95.2 Атрофический кольпит». Проведен сравнительный анализ частот встречаемости аберрантных клеток в многослойном плоском неороговевающем эпителии и цилиндрическом эпителии шейки матки в указанных группах.
Результаты. В образцах плоского эпителия у пациенток с атрофическим кольпитом обнаружено двукратное повышение количества клеток с микроядром по сравнению со здоровыми женщинами. В образцах цилиндрического эпителия у женщин из 2-й группы повышены частоты встречаемости клеток с ядром атипичной формы, с конденсированным хроматином и кондерсированным хроматином и вакуолизацией ядра.
Обсуждение. Учитывая изменения состояния плоского и цилиндрического эпителиев шейки матки, характерные для данной возрастной группы в целом, следует считать атрофический кольпит и связанное с ним повышение цитогенетической нестабильности дополнительными факторами риска злокачественных новообразований у женщин.
Заключение. Поскольку сдвиги в спектрах цитогенетических аномалий происходят по небольшому количеству показателей, не всегда заметно выражены, требуется систематический контроль состояния цервикального эпителия для своевременного выявления неблагоприятных изменений.
Annotation
The aim of the work is a comparative analysis of the spectrum and frequencies of occurrence of aberrant cells in the multilayered squamous nonkeratinizing epithelium and columnar epithelium of the cervix in postmenopausal healthy women and women diagnosed with «atrophic colpitis».
Material and methods. 41 postmenopausal women aged 60-65 years were examined. The 1st group included 20 healthy women, the 2nd group included 21 women diagnosed with «N95.2 Atrophic colpitis». A comparative analysis of the frequencies of occurrence of aberrant cells in the multilayered squamous nonkeratinizing epithelium and columnar epithelium of the cervix in these groups was performed.
Results. In the samples of squamous epithelium of patients with atrophic colpitis, a twofold increase in the number of cells with micronuclei was found compared to healthy women. In samples of columnar epithelium in women from the 2nd group, the frequencies of occurrence of cells with an atypical nucleus, with condensed chromatin and condensed chromatin and vacuolation of the nucleus were increased.
Discussion. Thus, taking into account the changes in the state of the squamous and columnar epithelium of the cervix, characteristic of this age group as a whole, atrophic colpitis and the associated increase in cytogenetic instability should be considered additional risk factors for malignant neoplasms in women.
Conclusion. Since shifts in the spectra of cytogenetic anomalies occur for a small number of indicators, are not always noticeably expressed, systematic monitoring of the state of the cervical epithelium is required for the timely detection of unfavorable changes.
Key words: atrophic colpitis; nuclear abnormalities; stratified squamous nonkeratinizing epithelium; postmenopause; columnar epithelium; cervix
Список литературы
ЛИТЕРАТУРА (пп. 4-5, 8, 11, 17, 18, 22-24, 26-28, 30 см. REFERENCES)
1. Медведева И.Н., Святченко К.С. Эффективность сочетанного трансдермального применения эстрогенов и гормоновыделяющей внутриматочной системы для коррекции менопаузальных расстройств. Журнал акушерства и женских болезней. 2020; 69(1):37-44. DOI: 10.17816/JOWD69137-44.
2. Данькина И.А., Данькина В.В., Чистяков А.А., Данькин К.В. Особенности состава биотопа влагалища и внутриматочной жидкости при серозометре у пациенток в позднем постменопаузальном периоде. Вестник гигиены и эпидемиологии. 2021; 25(4):410-2.
3. Бахтияров К.Р., Чилова Р.А., Сардарова Ш.Ш. Диагностика и современные методы лечения вульвовагинальной атрофии у женщин в постменопаузе. Лечащий Врач. 2021; 12(24):17-21. DOI: 10.51793/OS.2021.24.12.002.
6. Лужнова С.А., Панченко А.А., Панченко С.В. Значимость цитологического дообследования женщин в условиях санаторно-курортного лечения. В кн.: Сборник научных трудов по материалам XLII Международной научно-практической конференции «Фундаментальные научно-практические исследования: актуальные тенденции и инновации». Анапа; 2023; 57-63.
7. Ермакова Е.И. Ведение пациенток с генитоуринарным менопаузальным синдромом и эстроген-зависимыми онкозаболеваниями репродуктивной системы в анамнезе. Акушерство и гинекология. Новости. Мнения. Обучение. 2020; 8(2):75-9. DOI: 10.24411/2303-9698-2020-12002.
9. Боровкова Л.В., Ионова Е.В., Игнатьев А.А. Ранняя диагностика заболеваний шейки матки. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2019; 18(4):28-34. DOI: 10.20953/1726-1678-2019-4-28-34.
10. Давыдов А.И., Шахламова М.Н., Лебедев В.А. Цервикальная интраэпителиальная неоплазия, ассоциированная с папилломавирусной инфекцией: патогенетическое обоснование лечения пациенток в репродуктивном периоде. Вопросы гинекологии, акушерства и перинатологии. 2018; 17(3):66-72. DOI: 10.20953/1726-1678-2018-3-66-72.
12. Баяндина Н.Н., Славнова Е.Н. Возможности применения цифровых технологий в цитологической диагностике патологии шейки матки. Онкология. Журнал им. П.А. Герцена. 2021; 10(3):11-8. DOI: 10.17116/onkolog20211003111.
13. Идрисова Л.С., Хайтаева Х.М., Хадисова К.С., Шургая М.А., Чандирли С.А. Скрининг в диагностике патологии шейки матки. Региональный опыт ко-исследования. Вестник Всероссийского общества специалистов по медико-социальной экспертизе, реабилитации и реабилитационной индустрии. 2023; 2:60-70. DOI: 10.17238/issn1999-2351.2023.2.60-70.
14. Крысалова Т.И., Калаева Е.А., Калаев В.Н. Аномалии ядра в клетках многослойного плоского неороговевающего и цилиндрического эпителия шейки матки в разных возрастных группах. Клиническая лабораторная диагностика. 2024; 69(2):79-86. DOI:10.51620/0869-2084-2024-69-79-86.
15. Крысалова Т.И., Калаева Е.А., Калаев В.Н., Игнатова И.В. Влияние способа окрашивания на результаты цитологического исследования эпителия шейки матки. Клиническая лабораторная диагностика. 2023; 68(4):215-23. DOI: 10.51620/0869-2084-2023-68-4-215-223.
16. Кулаичев А.П. Методы и средства комплексного анализа данных. М.: ФОРУМ; ИНФРА–М; 2006.
19. Зайдуллин И.И., Каримова Л.К., Кабирова М.Ф., Садртдинова Г.Р., Галимова Р.Р., Валеева Э.Т. Использование микроядерного теста для оценки состояния пародонта у работников, подвергающихся воздействию вредных веществ. Гигиена и санитария. 2020; 99(9):956-60. DOI: 10.47470/0016-9900-2020-99-9-956-960.
20. Иванова С.М. Выделение эпителиальных клеток из образцов мочи человека для цитогенетической и цитотоксической оценки эффектов факторов среды микроядерным методом. Гигиена и санитария. 2019; 98(11): 1235-9. DOI: 10.18821/0016-9900-2019-98-11-1235-1239.
21. Моргуль Е.В., Белик С.Н., Аветисян З.Е., Квасов А.Р., Чеботарева Ю.Ю., Евдокимова Е.П. и др. Взаимосвязь уровня поражения генетического аппарата клеток со степенью нарушения репродуктивного здоровья в условиях вредного производства. Медицинский вестник Юга России. 2020; 11(4):113-20. DOI: 10.21886/2219-8075-2020-11-4-113-120.
25. Чайка В.К., Говоруха И.Т., Арбузова С.Б., Шведкая Е.В., Акимова И.К. Патоморфологические и цитогенетические аспекты ранних потерь беременности у женщин после преодоленного бесплодия. Унiверситетська клiнiка. 2010; 6(1-2):16-9.
27. Сутягина О.И., Кисурина-Евгеньева О.П., Онищенко Г.Е. Элиминация микроядер в клетках культуры аденокарциномы молочной железы человека MCF-7. Цитология. 2019; 61(2):106-18. DOI: 10.1134/S0041377119020081.
REFERENCES
Medvedeva I.N., Svyatchenko K.S. Efficacy of combined transdermal application of estrogens and hormone-releasing intrauterine system for correction of menopausal disorders. Zhurnal akusherstva i zhenskikh bolezney. 2020; 69(1): 37–44. DOI: 10.17816/JOWD69137-44. (in Russian)
Dan’kina I.A., Dan’kina V.V., Chistyakov A.A., Dan’kin K.V. Peculiarities of the composition of the vaginal biotope and intrauterine fluid during serometry in patients in the late postmenopausal period. Vestnik gigieny i epidemiologii. 2021; 25(4): 410–2. (in Russian)
Bakhtiyarov K.R., Chilova R.A., Sardarova Sh.Sh. Diagnostics and modern methods of treatment of vulvovaginal atrophy in postmenopausal women. Lechashchiy Vrach. 2021; 12(24): 17-21. DOI: 10.51793/OS.2021.24.12.002. (in Russian)
Pérez-López F.R., Phillips N., Vieira-Baptista P., Cohen-Sacher B., Fialho S.C.A.V., Stockdale C.K. Management of postmenopausal vulvovaginal atrophy: recommendations of the International Society for the Study of vulvovaginal disease. Gynecol. Endocrinol. 2021; 37(8): 746-52. DOI: 10.1080/09513590.2021.1943346.
Bond J.C., Kachura J.J., Fox M.P., Weuve J., Harlow B.L. Potential for selection bias in studies of the association of hormonal contraception and chronic vulvar pain. J. Womens Health (Larchmt). 2022; 31(2): 194-201. DOI: 10.1089/jwh.2020.8857.
Luzhnova S.A., Panchenko A.A., Panchenko S.V. Significant cytological examination of women in the context of sanatorium-resort treatment. XLII International Scientific and Practical Conference «Fundamental scientific and practical research: current trends and innovations» [XLII Mezhdunarodnaya nauchno-prakticheskaya konferentsiya «Fundamental’nye nauchno-prakticheskie issledovaniya: aktual’nye tendentsii i innovatsii»]. Anapa; 2023: 57-63. (in Russian)
Ermakova E.I. Management of patients with genitourinary menopausal syndrome and a history of estrogen-dependent oncological diseases of the reproductive system. Akusherstvo i ginekologiya. Novosti. Mneniya. Obuchenie. 2020; 8(2): 75-9. DOI: 10.24411/2303-9698-2020-12002. (in Russian)
Ozaki Y., Tomoe H., Shimomura M., Ninomiya N., Sekiguchi Y., Sato Y. et al. Female sexual dysfunction and lower urinary tract symptoms associated with vulvovaginal atrophy symptoms: Results of the GENJA study. Int. J. Urol. 2023; 30(10): 860-5. DOI: 10.1111/iju.15216.
Borovkova L.V., Ionova E.V., Ignat’ev A.A.. Early diagnosis of cervical diseases. Voprosy ginekologii, akusherstva i perinatologii. 2019; 18(4): 28-34. DOI: 10.20953/1726-1678-2019-4-28-34. (in Russian)
Davydov A.I., Shakhlamova M.N., Lebedev V.A. Сervikal intraepithelial neoplasia associated with papillomavirus infection: pathogenetic basis for treatment of patients in the reproductive period. Voprosy ginekologii, akusherstva i perinatologii. 2018; 17(3): 66-72. DOI: 10.20953/1726-1678-2018-3-66-72. (in Russian)
Dias Gonçalves Lima F., Molina M.A. Uncovering the HPV types causing cervical cancer. Nat. Microbiol. 2024; 9(11): 2795-6. DOI: 10.1038/s41564-024-01835-2.
Bayandina N.N., Slavnova E.N. Possibilities of using digital technologies in cytological diagnostics of cervical pathology. Onkologiya. Zhurnal im. P.A. Gertsena. 2021; 10(3): 11-8. DOI: 10.17116/onkolog20211003111. (in Russian)
Idrisova L.S., Khaytaeva Kh.M., Khadisova K.S., Shurgaya M.A., Chandirli S.A. Screening in diagnostics of cervical pathology. Regional experience of co-study. Vestnik Vserossiyskogo obshchestva spetsialistov po mediko-sotsial’noy ekspertize, reabilitatsii i reabilitatsionnoy industrii. 2023; 2: 60-70. DOI: 10.17238/issn1999-2351.2023.2.60-70. (in Russian)
Krysalova T.I., Kalaeva E.A., Kalaev V.N. Nuclear anomalies in the cells of the stratified squamous non-keratinizing and cylindrical epithelia of the cervicus in different age groups. Klinicheskaya Laboratornaya Diagnostika. 2024; 69(2): 79–86. DOI: 10.51620/0869-2084-2024-69-79-86. (in Russian)
Krysalova T.I., Kalaeva E.A., Kalaev V.N., Ignatova I.V. The influence of the staining method on the results of cytological examination of the cervical epithelium. Klinicheskaya Laboratornaya Diagnostika. 2023; 68(4): 215-23. DOI: 10.51620/0869-2084-2023-68-4-215-223. (in Russian)
Kulaichev A.P. Methods and tools for complex data analysis [Metody i sredstva kompleksnogo analiza dannyh]. Moscow: FORUM; INFRA–M; 2006. (in Russian)
Marković A., Grujičić D., Živković Radojević M., Milošević-Djordjević O. Measurement of chromosomal instability and level of DNA damage in peripheral blood mononuclear cells of endometrial cancer patients. Mutagenesis. 2024; 39(3): 172-80. DOI: 10.1093/mutage/geae003.
Cairns J. Mutation selection and the natural history of cancer. Nature. 1975; 255: 197-200.
Zaydullin I.I., Karimova L.K., Kabirova M.F., Sadrtdinova G.R., Galimova R.R., Valeeva E.T. Assessment of periodontal conditions in workers exposed to harmful substances using the micronucleus test. Gigiena i Sanitariya. 2020; 99(9): 956-60. DOI: 10.47470/0016- 9900-2020-99-9-956-960. (in Russian)
Ivanova S.M. Separation of exfoliated epithelial cells from human urine samples for cytogenetic and cytotoxic evaluation of the effects of factors by the micronucleus assay. Gigiena i sanitariya. 2019; 98(11): 1235-9. DOI: 10.18821/0016-9900-2019-98-11-1235-1239. (in Russian)
Morgul’ E.V., Belik S.N., Avetisyan Z.E., Kvasov A.R., Chebotareva Yu.Yu., Evdokimova E.P. et al. Relationship of the damage level of cell genetic apparatus with reproductive health disorder degree under conditions of harmful production. Meditsinskiy vestnik Yuga Rossii. 2020; 11(4): 113-20. DOI: 10.21886/2219-8075-2020-11-4-113-120. (in Russian)
Bolognesi C., Fenech M. Micronucleus cytome assays in human lymphocytes and buccal cells. Methods Mol. Biol. 2019; 2031: 147-63. DOI: 10.1007/978-1-4939-9646-9_8.
de Souza D.V., Dos Anjos Rosario B., Takeshita W.M., de Barros Viana M., Nagaoka M.R., Dos Santos J.N. et al. Is micronucleus assay in oral exfoliated cells a suitable biomarker for predicting cancer risk in individuals with oral potentially malignant disorders? A systematic review with meta-analysis. Pathol. Res. Pract. 2022; 232: 153828. DOI: 10.1016/j.prp.2022.153828.
Salimi M., Eskandari E. Association of elevated peripheral blood micronucleus frequency and bmi-1 mRNA expression with metastasis in Iranian breast cancer patients. Asian Pac. J. Cancer Prev. 2018; 19(10): 2723–30. DOI: 10.22034/APJCP.2018.19.10.2723.
Chaika V.K., Govorukha I.T., Arbuzova S.B., Shvedkaya E.V., Akimova I.K. Pathomorphologic and citogenic aspects of early pregnancy losses in women after treated infertility. Universitets’ka klinika. 2010; 6(1-2): 16-9. (in Russian)
Tiwana K.K., Kaur M., Goyal S., Bhandhari L. The role of micronucleus scoring in cervical papanicolaou smears: A 1-year study. Ann. Afr. Med. 2022; 21(4): 355-60. DOI: 10.4103/aam.aam_87_21.
Mishra S., Khurana U., Kapoor N., Joshi A., Joshi D. Evaluation of the Cytonucleomorphometric Parameters for Cases Diagnosed as Squamous Cell Abnormality on Conventional Cervico-Vaginal Pap Smears. J. Cytol. 2023; 40(1): 5-11. DOI: 10.4103/joc.joc_73_22.
Belekar S.V., Kamal M., Warke A.S. Cervical cytology and histology correlation as an analytic quality assurance exercise: experience from an accredited cytology laboratory. J. Cytol. 2023; 40(4): 205-10. DOI: 10.4103/joc.joc_174_22.
Sutyagina O.I., Kisurina-Evgen’eva O.P., Onishchenko G.E. Elimination of micronuclei in human breast adenocarcinoma culture cells MKF-7. Tsitologiya. 2019; 61(2): 106-18. DOI: 10.1134/S0041377119020081. (in Russian)
Poflee S.V., Bhatia J.K. Cervical cytology: Radiation and other therapy effects. Cytojournal. 2022; 19: 32. DOI: 10.25259/CMAS_03_12_2021.
Gnade C.M., Hill E.K., Botkin H.E., Hefel A.R., Hansen H.E., Sheets K.A. et al. Is the age of cervical cancer diagnosis changing over time? Journal of Gynecology Obstetrics and Human Reproduction. 2021; 50(7): 102040. DOI: 10.1016/j.jogoh.2020.102040.
Wu J., Jin Q., Zhang Y., Ji Y., Li J., Liu X. et al. Global burden of cervical cancer: current estimates, temporal trend and future projections based on the GLOBOCAN 2022. Journal of the National Cancer Center. 2025; 5(3): 322-9. DOI: 10.1016/j.jncc.2024.11.006.
Key Statistics for Cervical Cancer. Available at: https://www.cancer.org/cancer/types/cervical-cancer/about/key-statistics.html.
Fontham E.T.H., Wolf A.M.D., Church T.R., Etzioni R., Flowers C.R., Herzig A. et al. Cervical cancer screening for individuals at average risk: 2020 guideline update from the American Cancer Society. CA Cancer J. Clin. 2020; 70: 321-46. DOI: 10.3322/caac.21628.