БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫЕ ПЕПТИДЫ В РЕГУЛЯЦИИ МЕТАБОЛИЗМА. ПЕПТОНЫ, АМИНОКИСЛОТЫ, ЖИРНЫЕ КИСЛОТЫ, ЛИПОПРОТЕИНЫ, ЛИПИДЫ И ДЕЙСТВИЕ НУТРИЦЕВТИКОВ

Аннотация

Согласно филогенетической теории общей патологии, формирование многоклеточных стало происходить, когда каждая из клеток (одноклеточных) достигла первого уровня относительного биологического совершенства. К этому времени, стимулы совершенствования одноклеточных были исчерпаны; формирование многоклеточных в биологии стало необходимостью. Все клетки в ассоциации начали формировать второй уровень относительного биологического совершенства при соблюдении принципа биологической преемственности. В ассоциацию вступили высоко организованные одноклеточные с присущими им аутокринными биологическими функциями и биологическими реакциями. На втором уровне относительного биологического совершенства, в паракринно реулируемых сообществах (ПС) клеток и органов все гуморальные медиаторы были, в основном, гидрофильными, короткоживущими. Они имели небольшую мол. массу; вероятно, это были биологически активные пептиды (БАП), олигопептиды. Основой функционального различия разных ПС клеток, а позже и органов, стало, мы полагаем, дифференцирование функции лизосом, синтез разных ферментов для протеолиза белков пищи. Это позволило разным ПС клеток и органам из одного белка формировать при протеолизе химически и функционально разные пулы БАП. Именно индивидуальные пулы пептидов в ПС клеток стали основой формирования морфологически и функционально разных клеток, а далее и органов. Клетка, формируя пептиды, может изменять концентрацию их, химическую природу и соотношение, изменяя селективность синтезируемых протеаз. Регуляция in vivo метаболизма биологически активными пептидами имеет общие начала у бактерий, растений, у высших позвоночных, включая и вид Homo sapiens. Третий уровень относительного биологического совершенства сформировался в организме при действии когнитивной биологической функции.

Об авторах

Список литературы

Титов В.Н. Филогенетическая теория становления болезни, теория патологии, патогенез «метаболических пандемий» и роль клинической биохимии. Клиническая лабораторная диагностика. 2012; 10: 5 — 13

Davami F., Baldi L., Rajendra Y., M Wurm F. Peptone Supplementation of Culture Medium Has Variable Effects on the Productivity of CHO Cells. Int. J. Mol. Cell. Med. 2014; 3(3): 146 — 56.

Jung E., Cho J.Y., Park D., Kim M.H., Park B., Lee S.Y., Lee J. Vegetable peptones increase production of type I collagen in human fibroblasts by inducing the RSK-CCAAT/enhancer binding protein-β phosphorylation pathway. Nutr. Res. 2015; 35(2): 127 — 35.

Ариповский А.В., Колесник П.О., Веждел М.И., Титов В.Н. Метод подготовки проб для газохроматографического определения жирных кислот без предварительной экстракции липидов. Клиническая лабораторная диагностика. 2012; 1: 3 — 6

Fatma Z.N., Bery W., Waluyo H. The effect of peptide (Asp-Glu) synthetic base on sterilized fermented soymilk on lipid profile of sprague dawley rats. Intern. Food. Res. J. 2013; 20(6): 3047 — 52.

Um M.Y., Akn J., Jung C.H., Ha T.Y. Cholesterol-lowering effect of rice protein by enhancing fecal excretion of lipids in rats. Prev. Nutr. Food. Sci. 2013; 18(3): 210 — 3.

Vahouny G.V., Adamson I., Chalcarz W., Satchithanandam S., Muesing R. Effects of casein and soy protein on hepatic and serum lipids and lipoprotein lipid distributions in the rat. Atherosclerosis. 1985; 56(2): 127 — 37.

Vik R., Tillander V., Skorve J., Vihervaara T., Ekroos K., Alexson S.E., Berge R.K., Bjørndal B. Three differently generated salmon protein hydrolysates reveal opposite effects on hepatic lipid metabolism in mice fed a high-fat diet. Food. Chem. 2015; 183: 101 — 10.

Jang Y.J., Kim M.H., Nam S.H., Kang M.Y. Effects of solid-state fermented rice on lipid metabolism and antioxidant status in high-cholesterol-fed rats. J. Med. Food. 2007; 10(4): 608 — 14.

Wergedahl H., Liaset B., Gudbrandsen O.A., Lied E., Espe M., Muna Z. Fish protein hydrolysate reduces plasma total cholesterol, increases the proportion of HDL cholesterol, and lowers acyl-CoA:cholesterol acyltransferase activity in liver of zucker rats. J. Nutr. 2004; 134(6): 1320 — 7.

Yoshikawa M., Fujita H., Matoba N., Takenaka Y., Yamamoto T. Bioactive peptides derived from food proteins preventing lifestyle-related diseases. Biofactors. 2000; 12(1-4): 143 — 6.

Saito M., Kiyose C., Higuchi T., Uchida N., Suzuki H. Effect of collagen hydrolysates from salmon and trout skins on the lipid profile in rats. J. Agric. Food. Chem. 2009; 57(21): 10477 — 82.

Erdmann K., Cheung B.W., Schröder H. The possible roles of food-derived bioactive peptides in reducing the risk of cardiovascular disease. J. Nutr. Biochem. 2008; 19(10): 643 — 54.

Pak V.V., Koo M., Lee N., Kim M.S., Know D.Y. Atructure-activity relationship of the peptide lle-Ala-Val-Pro and it’s derivatives revealed using semi-empirical AM1 method. Chem. Nat. Comp. 2005; 41(4): 454 — 60.

Hartmann R., Meisel H. Food-derived peptides with biological activity: from research to food applications. Curr. Opin. Biotechnol. 2007; 18(2): 163 — 9.

Chim-Chi Y., Betancur-Ancona D., Jimenez-Martinez C., Chel-Guerrero L., Davila-Ortiz G. Cholesterol metabolism and it’s regulation by functional foods. Intern. J. Environment. Agricult. Biotechnol. 2016; 1(1): 697 — 707.

Александровский Я.А., Титов В.Н. Влияние структурной организации ассоциатов холестерина в водноорганических средах на реакцию его окисления, катализируемую холестериноксидазой. Биохимия. 1993; 58(9): 1408 — 19

Jin B., Zhou X., Li B., Lal W., Li X. Influence of in vitro digestion on antioxdative activity of coconut meat protein hudrolysate. Tropical. Pharm. Res. 2015; 14(3): 441 — 7

Лохов П.Г., Маслов Д.Л., Трифонова О.П., Балашова Е.Е., Арчаков А.И. Проблемы терапевтического мониторинга и клинической фармакокинетики лекарственных средств. Биомедицинская химия. 2014; 60(2): 201 — 16.

Лохов П.Г., Маслов Д.Л., Балашова Е.Е., Трифонова О.П., Медведева Н.В. Масс-спектрометрический анализ липидома плазмы крови, как способ диагностики заболеваний, оценки эффективности и оптимизации лекарственной терапии. Биомедицинская химия. 2015; 61(1): 7 — 18.

Chen M., Li B. The effect of molecular weights on survavibility of casein-derived antioxidant peptides after the simulated gastrointestinal digestion. Innovat. Food. Sci. En. Technol. 2012; 16: 340 — 8.

Mallet J.F., Duarte J., Vinderola G., Anguenot R., Beaulieu M., Matar C. The immunopotentiating effects of shark-derived protein hydrolysate. Nutrition. 2014; 30(6): 706 — 12.

Duarte J., Vinderola G., Ritz B, Perdigón G, Matar C. Immunomodulating capacity of commercial fish protein hydrolysate for diet supplementation. Immunobiology. 2006; 211(5): 341 — 50.

Marchbank T., Elia G., Playford R. Intestinal protective effect of a commercial fish protein hydrolysate preparation. Regul. Pept. 2009; 155(1-3): 105 — 9.

Bello A.E., Oesser S. Collagen hydrolysate for the treatment of osteoarthritis and other joint disorders: a review of the literature. Curr. Med. Res. Opin. 2006; 22(11): 2221 — 32.

Jakubowicz D., Froy O. Biochemical and metabolic mechanisms by which dietary whey protein may combat obesity and Type 2 diabetes. J. Nutr. Biochem. 2013; 24(1): 1 — 5.

Boutin Y., Paradis M.E., Couture P., Lamarche B. Immunological effects of fish protein supplementation on healthy adults. J. Natur. Prod. 2012; 5: 37 — 44.

Albenzio A., Santillo A., Caroprese M., Della Malva A, Marino R. Bioactive peptides in animal. Food. Products. Foods. 2017; 6(5): E35.

Лохов П.Г., Трифонова О.П., Маслов Д.Л., Балашова Е.Е., Арчаков А.И. Диагностика нарушенной толерантности к глюкозе прямым масс-спектрометрическим анализом метаболитов в плазме крови. Проблемы эндокринологии. 2014; 3: 4 — 9

McCarthy A.L., O’Callaghan Y.C., Brien N.M. Protein hydrolysates from adricultural crops — bioactivity and potential for functional food development. Agriculture. 2013; 3: 112 — 30.

Rutherford-Markwick K.J. Food proteins as a source of bioactive peptides with diverse functions. Br. J. Nutr. 2012; 108(Suppl 2): S149 -S157.

Hsieh C.C., Fernandez-Ledesma B., Fernández-Tomé S., Weinborn V., Barile D. Milk proteins, peptides, and oligosaccharides: effects against the 21st Century Disorders. Biomed. Res. Intern. 2015; 2015: 1 — 16.

Шатаева Л.К., Хавинсон В.Х., Ряднова И.Ю. Пептидная саморегуляция живых систем. С-Пб: Наука; 2003

Daliri E.B.M., Oh D.H., Lee B.H. Bioactive peptides. Foods. 2017; 6: 32 — 8

Телишевская Л.Я. Белковые гидролизаты. М.: Аграрная наука; 2000

Myers A.J., Goodband R.D., Tokach M.D., Dritz S.S., DeRouchey J.M., Nelssen J.L. The effects of porcine intestinal mucosa protein sources on nursery pig growth performance. J. Anim. Sci. 2014; 92(2): 783 — 92

Титов В.Н. Филогенетическая теория общей патологии. Патогенез метаболических пандемий. Артериальная гипертония. М.: ИНФРА-М; 2015.

Титов В.Н. Клиническая биохимия. Курс лекций. М.: ИНФРА-М; 2017.

Davami F., Eghbalpour F., Nematollahi L., Barkhordari F., Mahboudi F. Effects of peptone supplementation in different culture media on growth, metabolic pathway and productivity of CHO DG44 cells; a new insight into amino acid profiles. Iran. Biomed. J. 2015; 19(4): 194 — 205

Трифонова О.П., Лохов П.Г., Арчаков А.И. Метаболомное профилирование крови. Биомедицинская химия. 2014; 60(3): 281 — 94

Mahaddalkar T., Mehta S., Cheriyamundath S., Muthurajan H., Lopus M. Tryptone-stabilized gold nanoparticles target tubulin and inhibit cell viability by inducing an unusual form of cell cycle arrest. Exp. Cell. Res. 2017; 360(2): 163 — 70.

Ji H., Xu L., Wang Z., Fan X., Wu L. Effects of thymosin β4 on oxygen-glucose deprivation and reoxygenation-induced injury. Int. J. Mol. Med. 2018; 41(3): 1749 — 55.

Tang Y., He Y. Numerical modeling of fluid and oxygen exchanges through microcirculation for the assessment of microcirculation alterations caused by type 2 diabetes. Microvasc. Res. 2018; 117: 61 — 73.

Wang G. Human antimicrobial peptides and proteins. Pharmaceuticals (Basel). 2014; 7(5): 545 — 94.

Ключевые слова