Аннотация
Обследованы пациенты с НЭО (n=121), ранее не получавшие специфического лечения следующих локализаций: 74 — поджелудочная железа, 20 — желудок, 12 — толстая кишка, 15 — другие локализации (легкие, простата, молочная железа, НЭО без выявленного первичного очага). В качестве контроля обследовали 54 практически здоровых доноров. Определение ХгВ в сыворотке крови проводили методом ИФА в плашечном формате на анализаторе BEP 2000 с использованием стандартизованной тест-системы Human Chromogranin B (USCN, КНР). Выявили, что уровни ХгВ в общей группе НЭО (медиана 18,9 нг/мл) были статистически значимо выше, чем в контрольной группе (8,8 нг/мл). Наиболее высокая медиана маркера обнаружена в группе больных НЭО толстой кишки (21,2 нг/мл), что превышало медиану контрольной группы более чем в 2,4 раза. По данным ROC-анализа в общей группе НЭО относительно контрольной группы площадь под кривой AUC составила 0,88 (95%ДИ 0,83-0,929). При пороговом уровне ХгВ 15,8 нг/мл диагностическая чувствительность составила 69,4% при специфичности 96,3%. Наиболее высокая диагностическая чувствительность была характерна для группы НЭО толстой кишки (75,0%) и поджелудочной железы (71,2%). Проведенное исследование показало значимость ХгВ как потенциального биохимического маркера, альтернативного ХгА, при НЭО различных локализаций.
Список литературы
Oberg K. Circulating biomarkers in gastroenteropancreatic neuroendocrine tumours. Endocr. Relat. Cancer. 2011; 18(1): 17–25.
Aluri V., Dilon J.S. Biochemical testing in neuroendocrine tumors. Endocrinol. Metab. Clin. North Am. 2017; 46(3): 669–77.
Vinik A.I., Silva M.P., Woltering E.A. et al. Biochemical testing for neuroendocrine tumors. Pancreas. 2009; 38(8): 876–89.
Hofland J., Kaltsas G., de Herder W.W. Advances in the Diagnosis and Management of Well-Differentiated Neuroendocrine Neoplasms. Endocr. Rev. 2020; 41(2): 371–403.
Cheng Y., Sun Z., Bai C., Yan X., Qin R., Meng C., Ying H. Serum chromogranin A levels for the diagnosis and follow-up of well-differentiated non-functioning neuroendocrine tumors. Tumour Biol. 2016; 37(3): 2863–9.
Jun E., Kim S.C., Song K.B., Hwang D.W., Lee J.H., Shin S.H., Hong S.M., Park K.M., Lee Y.J. Diagnostic value of chromogranin A in pancreatic neuroendocrine tumors depends on tumor size: A prospective observational study from a single institute. Surgery. 2017; 162(1): 120–30.
Corti A., Marcucci F., Bachetti T. Circulating chromogranin A and its fragments as diagnostic and prognostic disease markers. Pflugers Arch. 2018; 470(1): 199–210.
Ma Z.Y., Gong Y.F., Zhuang H.K., Zhou Z.X., Huang S.Z., Zou Y.P. et al. Pancreatic neuroendocrine tumors: a review of serum biomarkers, staging, and management. World J. Gastroenterol. 2020; 26(19): 2305–22.
Любимова Н.В., Томс М.Г., Чурикова Т.К., Харитиди Т.Ю. Клиническое значение хромогранина А при нейроэндокринных опухолях желудочно-кишечного тракта. Альманах клинической медицины. 2015; 41:35–9.
Laguerre F., Anouar Y., Montero-Hadjadje M. Chromogranin A in the early steps of the neurosecretory pathway. IUBMB Life. 2020; 72(4): 524–32.
Pulvirenti A., Rao D., Mcintyre C.A., Gonen M., Tang L.H., Klimstra D.S., Fleisher M., Ramanathan L.V., Reidy-Lagunes D., Allen P.J. Limited role of Chromogranin A as clinical biomarker for pancreatic neuroendocrine tumors. HPB (Oxford). 2019; 21(5): 612–8.
Campana D., Nori F., Piscitelli L., Morselli-Labate A.M., Pezzilli R., Corinaldesi R., Tomassetti P. Chromogranin A: is it a useful marker of neuroendocrine tumors? J. Clin. Oncol. 2007; 25(15): 1967–73.
Stridsberg M., Eriksson B., Fellström B., Kristiansson G., Tiensuu Janson E. Measurement of chromogranin B can serve as a complement to chromogranin A. Regulatory Peptides. 2007; 193: 80–3.
Stridsberg M., Oberg K., Li Q., Engström U., Lundqvist G. Measurment of chromogranin A, chromogranin B (secretogranin I), chromogranin C (secretogranin II) and pancreastatin in plasma and urine from patients with carcinoid tumours and endocrine pancreatic tumours. J. Endocrinol. 1995; 144(1): 49–59.
Bech P.R., Martin N.M., Ramachandran R., Bloom S.R. The biochemical utility of chromogranin A, chromogranin B and cocaine – and amphetamine-regulated transcript for neuroendocrine neoplasia. Ann. Clin. Biochem. 2014; 51(1): 8–21.
Miki M., Ito T., Hijioka M., Lee L., Yasunaga K., Ueda K., Fujiyama T., Tachibana Y., Kawabe K., Jensen R.T., Ogawa Y. Utility of chromogranin B as a biomarker in Japanese patients with pancreatic neuroendocrine tumors. Jpn. J. Clin. Oncol. 2017; 47(6): 520–8.
Monaghan P.J., Lamarca A., Valle J.W., Hubner R.A, Mansoor W., Trainer P.J., Darby D. Routine measurement of plasma chromogranin B has limited clinical utility in the management of patients with neuroendocrine tumours. Clin. Endocrinol. (Oxf.). 2016; 84(3): 348–52.