МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИЙ СПЕКТР АКУШЕРСКОЙ РАНЫ ПО РЕЗУЛЬТАТАМ МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКОГО АНАЛИЗА

Аннотация

Увеличение частоты инфекционных осложнений после кесарева сечения обосновывает целесообразность изучения причины развития инфекции хирургической акушерской раны – количественный и видовой состав микробиоты при изолированном и сочетанном с инфекцией половых путей течении воспалительного процесса. В гинекологической практике для диагностики этиологических агентов инфекционных послеоперационных осложнений широко используют молекулярно-генетические тест-системы. Среди них «ФЕМОФЛОР 16» – современная и высокоточная тест-система на основе полимеразной цепной реакции, позволяющей определить качественный и количественный состав микрофлоры урогенитального тракта у женщин. Данная тест-система не входит в перечень диагностических методов, предлагаемых клиническими рекомендациями, для обследования пациентов с инфекцией хирургической акушерской раной. Однако позволяет быстро проанализировать видовой спектр микробиоты, способной вызывать инфицирование раны и развитие несостоятельности швов после кесарева сечения.
Цель — при помощи молекулярно-генетического метода оценить видовой спектр возбудителей инфекции хирургической акушерской раны при изолированном и сочетанном с инфекцией половых путей варианте течения процесса.
Идентификацию микроорганизмов проводили в биологическом материале из цервикального канала и из раны на передней брюшной стенке при помощи тест- системы «ФЕМОФЛОР 16» («ДНК-Технология», Россия). Для статистической обработки использован десятичный логарифм содержания в биологическом образце геном-эквивалента каждого вида микроорганизма (lg ГЭ/об.). Статистическую обработку данных проводили на персональном компьютере с использованием статистической программы R-4.0.2 и электронных таблиц Excel.
Комплексная оценка частоты встречаемости и количества микроорганизмов в биологическом материале у женщин с инфекцией хирургической акушерской раной, позволила предположить, что клинически значимыми микроорганизмами, влияющими на развитие воспалительного процесса при изолированном (O86.0) и сочетанном с инфекцией половых путей (O86.0+O86.1) вариантах течения процесса, являются представители рода Staphylococcus, ассоциация микроорганизмов, состоящая из G. vaginalis, P. bivia, Porphyromonas spp., M. hominis, U. urealyticum, U. parvum. Среди перечисленных микроорганизмов на тяжесть течения хирургической акушерской раны как при изолированном (группа О86.0), так и при сочетанным с инфекцией половых путей (группа О86.0+О86.1) вариантах течения процесса влияет содержание в ране на передней брюшной стенке количество Staphylococcus spp. (r=0,68; r=0,73, соответственно). При присоединении к инфекции хирургической акушерской раны инфекции половых путей (группа О86.0+О86.1) на длительность течения процесса влияет количество в инфицированном шве и в уретре M. hominis (r=0,78), U. Urealyticum, U. parvum (r=0,73). Между количеством микроорганизмов и количеством дней госпитализации отмечается высокая, прямая статистически значимая корреляционная связь (p <0,05).

Annotation

An increase in the incidence of infectious complications after cesarean section justifies the feasibility of studying the cause of infection of a surgical obstetric wound — the quantitative and species composition of the microbiota in an isolated and combined course of the inflammatory process with infection of the genital tract. Currently, molecular genetic test systems are widely used in gynecological practice to diagnose etiological agents of infectious postoperative complications. Among them, «FEMOFLOR 16» is a modern and high-precision test system based on the polymerase chain reaction, which allows you to determine as accurately as possible the qualitative and quantitative composition of the microflora of the urogenital tract in women. This test system is not included in the list of diagnostic methods offered by clinical guidelines for the examination of patients with infection with a surgical obstetric wound. However, it allows you to quickly analyze the species spectrum of microbiota representatives who can cause wound infection and the development of suture failure after caesarean section.
Оbjective – using a molecular genetic method to assess the microbiological spectrum of infection of a surgical obstetric wound in an isolated and combined with infection of the genital tract variant of the process.
Identification of microorganisms was carried out in biological material from the cervical canal and from a wound on the anterior abdominal wall using the «FEMOFLOR 16» test system («DNA-Technology», Russia). For statistical processing, the decimal logarithm of the content in the biological sample of the genome equivalent of each microorganism (lg genome-equivalent in the sample) was used. Statistical data processing was performed on a personal computer using a statistical R-4.0.2 program and Excel spreadsheets.
A comprehensive assessment of the incidence and number of microorganisms in biological material in women with surgical obstetric wound infection suggested that significant microorganisms affecting the development of the inflammatory process in isolated (O86.0) and combined with infection of the genital tract (O86.0+O86.1) variants of the process, are representatives of the genus Staphylococcus, as well as a complex of microorganisms consisting of G. vaginalis, P. bivia, Porphyromonas spp., M. hominis, U. urealyticum, U. parvum. Among those listed, the severity of the surgical obstetric wound in both isolated (group O86.0) and combined with infection of the genital tract (group O86.0+O86.1) variants of the process course is influenced by the content of Staphylococcus spp. representatives in the wound on the anterior abdominal wall. (r=0,68; r=0.73, respectively). In addition, when the surgical obstetric wound is infected with genital tract infection (group O86.0+O86.1), the duration of the process is affected by the content of M. hominis (r=0.78), U. urealyticum and U. parvum (r=0.73) in the infected suture and in the urethra. Between the number of microorganisms, on the one hand, and the number of days of hospitalization, on the other, there is a high, direct statistically significant correlation (p<0.05). Key words: microbiota of surgical obstetric wound; failure of sutures after cesarean section; molecular genetic analysis; FEMOFLOR 16 test system.

Об авторах

Список литературы

1.Vaginal microbiota: possibilities of correction of dysbiotic conditions: textbook. Voroshilova E.S., Plotko E.E., Islamidi D.K., Kudryavtseva E.V., Kovalev V.V. Zornikov D.L. et al., eds. Yekaterinburg: Ural`skiy meditsinskiy universitet; 2022. (in Russian)
2.Starikova D.V., Bogacheva N.V., Zaytseva E.G. Insolvency of sutures after abdominal delivery: problems and solutions (literature review). Vestnik Novgorodskogo gosudarstvennogo universiteta. 2(131): 322-37. DOI: 10.34680/2076-8052.2023.2(131).322-3372. (in Russian)
3.Shevchenko E.P., Macas E.Yu., Mul’kina E.I. Real-time justification of polymerase chain reaction in women with urogenital diseases. Aktual’nye problemy sovremennoy meditsiny: Byulleten’ Ukrainskoy meditsinskoy stomatologicheskoy akademii. 2012; 1-2:37-8. (in Russian)
4.Andosova L.D., Kontorshchikova K.N., Kachalina O.V., Belov A.V., Gonova E.S., Kudel’kina S.Yu. Characteristics of biocenoses of the urogenital tract in women of reproductive age. Klinicheskaya Laboratornaya Diagnostika. 2013; 1: 49-53. (in Russian)
5.Agarev A.E., Zdol`nik T.D., Kovalenko M.S., Zotov V.V. Predicting the development of healthcare-associated infections in puerperas. Rossiyskiy mediko-biologicheskiy vestnik im. akad. I.P. Pavlova. 2017; 25 (4): 565-74. (in Russian)
6.Vlasova M.A., Suprun S.V., Morozova O.N. The influence of the massive infection of the genital tract with urogenital mycoplasmas on the course and outcomes of pregnancy in women of the Amur region. Byulleten’ fiziologii i patologii dykhaniya. 2018; 70: 56-9. (in Russian)
7.Kolesnikova E. A., Brusnigina N. F., Grigor’eva G. I. Mechanisms of antibiotic resistance of urogenital mycoplasmas. Zdorov’e naseleniya i sreda obitaniya. 2018; 20(1): 68-72. (in Russian)
8.Savicheva A.M., Krysanova A.A., Budilovskaya O.V., Spasibova E.V., Khusnutdinova T.A., Shalepo K.V. et al. Vaginal microbiota molecular profiling in women with bacterial vaginosis: a novel diagnostic tool. International Journal of Molecular Sciences. 2023; 24 (21): 15-8. DOI: 10.3390/ijms242115880. PMID: 37958862; PMCID: PMC10649576.
9.Kolesnikova E.A., Brusnigina N.F., Makhova M.A., Alekseeva A.E. Whole genome sequencing of Mycoplasma hominis strains resistant to ciprofloxacin. Klinicheskaya mikrobiologiya i antimikrobnaya khimioterapiya. 2018; 20(1): 68-72. (in Russian)
10.Durski M., Ravel J., Spautz A., Carvalho N., Silva M., Marconi C. Comparison of two microscopic interpretations of vaginal microbiota with molecular profiling. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 2022; 104 (1): 15-28. DOI: 10.1016/j. diagmicrobio.2022.115728. Epub 2022 May 26. PMID: 35780749.
11.Tkachenko L.V., Uglova N.D., Sviridova N.I., Skladanovskaya T.V. A modern approach to the treatment of vulvovaginal infections. Akusherstvo i ginekologiya: novosti, mneniya, obuchenie. 2018; 4 (22): 52-8. DOI: 10.24411/2303-9698-2018-14006. (in Russian)
12.Moosa Y., Kwon D., de Oliveira T., Wong E. Determinants of Vaginal Microbiota Composition. Front. Cell Infect. Microbiol. 2020; 10: 46-57. DOI: 10.3389/fcimb.2020.00467. PMID: 32984081; PMCID: PMC7492712.

Ключевые слова