ОБ ИНФОРМАТИВНОСТИ ВЫЯВЛЕНИЯ ГЕНОВ АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТИ В РАЗЛИЧНЫХ БИОТОПАХ ОРГАНИЗМА ПРИ ТУБЕРКУЛЕЗЕ

Аннотация

Цель исследования: провести сравнительный анализ информативности выявления генов антибиотикорезистентности в
биоматериале из различных биотопов организма детей и подростков с туберкулезной инфекцией.
Материал и методы. Исследовали биоматериал (отделяемое ротоглотки и прямой кишки) от детей и подростков (9-17
лет) с латентной туберкулезной инфекцией (n=53) и излеченных от туберкулеза (n=37) методом ПЦР на наличие генов
резистентности к антимикробным препаратам (АМП) (14 генов).
Результаты. Установлено, что у пациентов с латентной туберкулезной инфекцией и излеченных от туберкулеза, гены
антибиотикорезистентности выявляли чаще в биоматериале из прямой кишки (5 и 4 генов), чем из ротоглотки (3 и 1 генов).
В биоматериале из прямой кишки чаще (р≤0,05), чем из ротоглотки, определяли одномоментно несколько (два и три) гена
антибиотикорезистентности. Наиболее часто обнаруживаемым явился ген tem, который с одинаковой частотой выявляли
в биоматериале из ротоглотки и прямой кишки у всех пациентов. Реже, только в биоматериале из прямой кишки определяли
гены ctx-М-1 (20,8-27,0%), mecA (10,8-18,9%), vanA/В (1,9-2,7%).
Обсуждение. Длительное течение инфекционного процесса и проведение антимикробной терапии у пациентов с туберку-
лезной инфекцией приводит к сосредоточению генов антибиотикорезистентности в толстом кишечнике, что может быть
характерно для пациентов с хроническими, но не острыми инфекциями. Определение генов антибиотикорезистентности в
биоматериале дает представление не только о наличии генетической детерминированности антибиотикорезистентности
у микроорганизмов, но и позволяет судить о присутствии потенциальных патогенов в организме.
Заключение. У пациентов с туберкулезной инфекцией определение генов резистентности к АМП в биоматериале из прямой
кишки является более информативным, чем из ротоглотки.

Annotation

The purpose of the study: to conduct a comparative analysis of the informative value of identifying antibiotic resistance genes in
biomaterials from various body biotopes of children and adolescents with tuberculosis infection.
Material and methods. Biomaterial (oropharyngeal and rectal secretions) from children and adolescents (9-17 years old) with latent
tuberculosis infection (53 people) and cured of tuberculosis (37 people) was studied by PCR for the presence of antimicrobial resistance
genes (14 genes).
Results. It was found that in patients with latent tuberculosis infection and cured of tuberculosis, antibiotic resistance genes were
detected more often in biomaterial from the rectum (5 and 4 genes) than from the oropharynx (3 and 1 genes). Several (two and
three) antibiotic resistance genes were detected simultaneously in the biomaterial from the rectum more often (p<0.05) than from the
oropharynx. The tem gene was the most frequently detected, which was detected with the same frequency in the biomaterial from the
oropharynx and rectum in all patients. Less frequently, ctx-M-1 (20.8-27.0%), mecA (10.8-18.9%), and vanA/B (1.9-2.7%) genes were
detected only in rectal biomaterial.
Discussion. Prolonged course of the infectious process and antimicrobial therapy in patients with tuberculosis infection leads to the
concentration of antibiotic resistance genes in the large intestine, which may be typical for patients with chronic but not acute infections.
The determination of antibiotic resistance genes in a biomaterial gives an idea not only of the presence of genetic determination
of antibiotic resistance in microorganisms, but also allows us to judge the presence of potential pathogens in the body.
Conclusion. In patients with tuberculosis infection, the determination of antimicrobial resistance genes in the biomaterial from the
rectum is more informative than the oropharynx.

Key words: antibiotic resistance genes; biotopes; PCR; children; adults

Об авторах

Список литературы

Л И Т Е РАТ У РА ( П П . 1 — 4 , 8 , 1 0 , 1 2 — 1 5 С М .
R E F E R E NC E S )
5. Мангутов Э.О., Алиева А.А., Харсеева Г.Г., Воронина Н.А., Алек-
сеева Л.П., Евдокимова В.В., Якушева О.А., Попивненко М.Д.
Сorynebacterium spp.: взаимосвязь патогенных свойств и рези-
стентности к антимикробным препаратам. Клиническая лабора-
торная диагностика. 2022; 67 (9): 519-24. DOI: 10.51620/0869-
2084-2022-67-9-519-524.
6. Мангутов Э.О., Харсеева Г.Г., Подойницына О.А., Носков А.К.,
Кругликов В.Д., Алутина Э.Л., Горох А.М., Воронина Н.А., Ивли-
ева О.Н. Corynebacterium spp.: анализ профилей резистентности
к антимикробным препаратам у изолятов от больных с воспали-
тельными заболеваниями респираторного тракта и практически
здоровых лиц. Клиническая лабораторная диагностика. 2023; 68
(6): 356-64. DOI: 10.51620/0869-2084-2023-68-6-356-364.
7. Ивушкина Л.В., Миронов А.Ю. Микробиологический мониторинг
Klebsiella pneumoniae и механизмы их резистентности к анти-
микробным препаратам у больных туберкулёзом г. Москвы. Кли-
ническая лабораторная диагностика. 2024; 69(4): 131-41. DOI:
10.51620/0869-2084-2024-69-4-131-141.
9. Костинов М.П., Харсеева Г.Г., Тюкавкина С.Ю. Вакцинация лю-
дей с хронической патологией (материал для подготовки лекции).
Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение. 2021; 10 (2):
99-108. DOI: 10.33029/2305-3496-2021-10-2-99-108.
11. Гостев В.В., Сулян О.С., Павлова П.А., Нестерова Е.В., Кали-
ногорская О.С., Чулкова П.С., Трофимова Н.Н., Агеевец В.А.,
Агеевец И.В., Сидоренко С.В. Геномная характеристика mecA-
положительных Staphylococcus aureus ST59, проявляющих чув-
ствительность к оксациллину. Клиническая микробиология и ан-
тимикробная химиотерапия. 2023; 25(2): 116-22. DOI: 10.36488/
cmac.2023.2.116-122.
R E F E R E NC E S
1. Dadgostar P. Antimicrobial resistance: implications and costs. Infect.
Drug. Resist. 2019; 12: 3903-10. DOI: 10.2147/IDR.S234610.
2. Hofer U. The cost of antimicrobial resistance. Nat. Rev. Microbiol.
2019; 17(1): 3. DOI: 10.1038/s41579-01 0125-x.
3. Ahmad M., Khan A.U. Global economic impact of antibiotic resistance:
A review. J. Glob. Antimicrob. Resist. 2019; 19: 313-6. DOI:
10.1016/j.jgar.2019.05.
4. Zhuang M., Achmon Y., Cao Y., Liang X., Chen L., Wang H., A Siame
B., Leung K.Y. Distribution of antibiotic resistance genes in the envi-
ronment. Environmental. Pollution. 2021; 15(285): 117402. DOI:
10.1016/j.envpol.2021.117402.
5. Mangutov E.O., Alieva A.A., Kharseeva G.G.,Voronina N.A., Alekseeva
L.P., Evdokimova V.V., Yakusheva O.A., Popivnenko M.D. Corynebacterium
spp.: relationship of pathogenic properties and antimicrobial
resistance. Klinicheskaya Laboratornaya Diagnostika. 2022; 67 (9):
519-24. DOI: 10.51620/0869-2084-2022-67-9-519-524. (in Russian)
6. Mangutov E.O., Kharseeva G.G., Podoynitsyna О.А., Noskov A.K., Kruglikov
V.D., Alutina E.L., Gorokh A.M., Voronina N.A., Ivlieva О.N. Corynebacterium
spp.: analysis of antimicrobial resistance profiles in isolates from
patients with inflammatory diseases of the respiratory tract and practically
healthy individuals. Klinicheskaya Laboratornaya Diagnostika. 2023; 68
(6): 356-64. DOI: 10.51620/0869-2084-2023-68-6-356-364. (in Russian)
7. Ivushkina L.V., Mironov A.Yu. Microbiological monitoring of Klebsiella
pneumoniae and mechanisms of their resistance to antimicrobial
drugs in tuberculosis patients in Moscow. Klinicheskaya Laboratornaya
Diagnostika. 2024; 69 (4): 131-41. DOI: 10.51620/0869-2084-
2024-69-4-131-141. (in Russian)
8. Castanheira M., Simner P.J., Bradford P.A. Extended-spectrum
β-lactamases: an update on their characteristics, epidemiology and detection.
JAC Antimicrob. Resist. 2021 Jul 16; 3(3): dlab092. DOI:
10.1093/jacamr/dlab092.
9. Kostinov M.P., Kharseeva G.G., Tyukavkina S.Yu. Vaccination of people
with chronic pathology (material for preparing the lecture). Infektsionnye
bolezni: novosti, mneniya, obuchenie. 2021; 10(2): 99-108.
DOI: 10.33029/2305-3496-2021-10-2-99-108. (in Russian)
10. Wang X., Zhang H., Yu S., Li D., Gillings M. R , Ren H., Mao D., Guo
J., Luo Y. Inter-plasmid transfer of antibiotic resistance genes accelerates
antibiotic resistance in bacterial pathogens. The ISME Journal.
2024; 18(1): wrad032. DOI: 10.1093/ismejo/wrad032.
11. Gostev V.V., Sulian O.S., Pavlova P.A., Nesterova E.V., Kalinogorskaya
O.S., Chulkova P.S., Trofimova N.N., Ageevets V.A., Ageevets
I.V., Sidorenko S.V. Genomic characterization of oxacillin-susceptible
mecA-positive Staphylococcus aureus ST59. Klinicheskaya mikrobiologiya
I antimikrobnaya khimioterapiya. 2023; 25(2): 116-22. DOI:
10.36488/cmac.2023.2.116-122. (in Russian)
12. Koenen M.H., de Steenhuijsen P., Wouter A.A., Bogaert D., Verhagen
L.M. The microbiota in respiratory tract infections: from association to
intervention. Current Opinion in Infectious Diseases 2022; 35(3): 215-
22. DOI: 10.1097/QCO.0000000000000826.
13. Ramsey M.M., Freire M.O., Gabrilska R.A., Rumbaugh K.P., Lemon
K.P. Staphylococcus aureus Shifts toward Commensalism in Response
to Corynebacterium Species. Front Microbiol. 2016; 7: 1230. DOI:
10.3389/fmicb.2016.01230.
14. Adams M.D., Pasteran F., Traglia G.M., Martinez J., Huang F., Liu
C. et al. Distinct mechanisms of dissemination of NDM-1 metallo-β-
lactamase in Acinetobacter species in Argentina. Antimicrob. Agents
Chemother. 2020; 64(5): e00324-20. DOI: 10.1128/AAC.00324-20.
15. Hammoudi H.D., Ayoub M.C. The current burden of carbapenemases:
Review of significant properties and dissemination among gram-negative
bacteria. Antibiotics (Basel). 2020; 9(4): 186. DOI: 10.3390/
antibiotics9040186.

Ключевые слова