Аннотация
Проведён сравнительный анализ эффективности выявления противококлюшных антител трёх классов (IgM, IgG, IgA) с помощью четырёх коммерческих тест-систем, используемых для серологической диагностики коклюша в Российской Федерации: RIDASCRЕЕN («R-Bioрharm AG», Германия), NOVATEC («Immunodiagnostica GmbH», Германия), DRG («DRG Diagnostics», Германия), SAVYON («Savyon Diagnostics», Израиль). В исследование включено 42 сыворотки крови больных коклюшем детей и взрослых, госпитализированных в ГБУЗ «Инфекционная клиническая больница № 1» Департамента здравоохранения г. Москвы. Полное совпадение результатов исследования установлено в 40,5% случаев, в 42,9% выявлено неполное совпадение результатов по динамике выработки одного класса антител и в 9,5% случаев — несовпадение результатов по двум классам антител. Всего несовпадений результатов 7,1%. При определении антител класса IgM в сыворотке крови больных коклюшем наибольшее количество положительных результатов определено в тест-системе SAVYON — 83,3 ± 6,3% (35), NOVATEC — 71,4 ± 8,2% (30), RIDASCRЕЕN — 61,9 ± 9,7% (26), DRG — 45,2 ± 11,7% (19). Антитела класса IgG во всех тест-системах определялись на одном уровне. Некоторые различия наблюдались в определении антител класса IgA. Высокая частота выявления IgA была в тест-системе RIDASCRЕЕN — 59,5 ± 10,0% (25) и DRG — 50,0 ± 11,2% (21). В тест-системах NOVATEC и SAVYON этот показатель был ниже — 45,2 ± 11,7 и 26,2 ± 13,9% соответственно (19 и 11). Показано, что для серологических исследований может быть использована любая из четырёх тест-систем. Рекомендуется проводить диагностические исследования сывороток крови в одной выбранной тест-системе для получения сопоставимых результатов и интерпретировать результаты, полученные в одной тест-системе: при получении сомнительных результатов необходимо исследовать сыворотки в динамике одновременно в одной тест-системе.
Об авторах
Борисова Ольга ЮрьевнаФБУН «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского» Роспотребнадзора, 125212, Москва, Россия; e-mail: olgbоrisova@mail.ru ; https://orcid.org/0000-0001-6316-5046
Список литературы
Попова О.П., Скирда Т.А., Федорова И.М., Петрова М.С., Борисова О.Ю., Комбарова С.Ю. и др. Диагностическая ценность метода ИФА при коклюше у детей. Детские инфекции. 2016;15 (2): 36-40.
Грачева Н.М., Малышев Н.А., Петрова М.С., Попова О.П., Борисова О.Ю., Келли Е.И. Коклюш (клиника, диагностика, лечение): методические рекомендации. М.: Департамент здравоохранения города Москвы.; 2009.
Попова О.П., Скирда Т.А., Федорова И.М., Котелева С.И. Особенности специфического гуморального ответа и цитокиновой регуляции при коклюше у детей. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2015; 20 (5): 42-8.
He Q., Mertsola J., Himanen J.P., Ruuskanen O., Viljanen M.K. Evaluation of pooled and individual components of Bordetella pertussis as antigens in an enzyme Immunoassay for diagnosis of pertussis. European Journal of Clinical Microbiology and Infectious Diseases. 1993; 12(9): 690-5.
Mertsola J., Ruuskanen O., Kuronen T., Meurman O., Viljanen M.K. Serologic diagnosis of pertussis: evaluation of pertussis toxin and other antigens in enzyme-linked immunosorbent assay. Journal of Infection Diseases. 1990; 161 (5): 966-71.
Viljanen M.K., Ruuskanen O., Granberg C., Salmi T.T. Serological diagnosis of pertussis: IgM, IgA and IgG antibodies against Bordetella pertussis measured bu enzymelinked immunosorbent assay (ELISA). Scandinavian Journal of Infectious Diseases. 1982; 14 (2): 117-22.
Giammanco A., Nardone A., Pebody R., Kafatos G., Andrews N., Chiarini A. et al. European sero-epidemiology network 2: standardisation of immunoassay results for pertussis requires homogeneity in the antigenic preparations. Vaccine. 2008; 26 (35): 4486-93.
He Q., Mertsola J., Soini H., Skurnik M., Ruuskanen O., Viljanen M.K. Comparison of polymerase chain reaction with culture and enzyme immunoassay for diagnosis of pertussis. Journal of Clinical Microbiology. 1993; 31 (3): 642-5.
Riffelmann M., Thiel K., Schmetz J., Wirsing von Koenig C. H. Performance of commercial enzyme-linked immunosorbent assays for detection of antibodies to Bordetella pertussis. Journal of Clinical Microbiology. 2010; 48 (12): 4459-63.
Sanz Moreno J.C., de Ory Manchon F., Gonzalez A.J., de La Torre J.L., Salmeron F., Limia A. Laboratory diagnosis of pertussis. Role of serology. Enfermedades Infecciosas y Microbiologia Clinica. 2002; 20 (5): 212-8.
Litt D.J., Samuel D., Duncan J., Harnden A., George R.C., Harrison T.G. Detection of anti-pertussis toxin IgG in oral fluids for use in diagnosis and surveillance of Bordetella pertussis infection in children and young adults. Journal of Medical Microbiology. 2006; 55 (9): 1223-8.
Zackrisson G., Lagergard T., Trollfors B., Krantz I. Immunoglobulin A antibodies to pertussis toxin and filamentous hemagglutinin in saliva from patients with pertussis. Journal of Clinical Microbiology. 1990; 28 (7): 1502-5.