ПЕРВЫЕ РЕЗУЛЬТАТЫ ПРИМЕНЕНИЯ ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА В СЕРОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКЕ ИНФЕКЦИИ, ВЫЗВАННОЙ ГЕРПЕСВИРУСОМ ЧЕЛОВЕКА 7 ТИПА

Аннотация

HHV-7 (Human Herpes virus type 7) — относительно недавно открытый, повсеместно распространенный бета-герпесвирус. В РФ диагностика HHV-7-инфекции осуществляется методом ПЦР, направленным на определение ДНК в сыворотке или плазме крови, при наличии клинических показаний. Лабораторные серологические обследования на HHV-7 не проводятся. В настоящее время в научной литературе сведения о клинических исследованиях HHV-7-инфекции, ее эпидемиологии и роли в этиопатогенезе различных заболеваний представлены недостаточно. В данной работе приведены результаты разработки набора реагентов (иммуноферментной тест-системы) «ИФА-ВГЧ-7-IgG», предназначенного для выявления специфических антител класса G к HHV-7 методом твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА). Проведены исследования чувствительности и специфичности разработанного набора, в том числе на потенциально перекрестно-реактивных образцах, положительных в отношении других герпесвирусных инфекций. В аспекте серологической диагностики исследованы образцы сыворотки детей (167) и пожилых людей (238) на содержание IgG к HHV-7 с подтверждением полученных результатов в реакции непрямой иммунофлюоресценции и реакции иммунного блоттинга. Результаты исследований свидетельствуют о возможности применения разработанной иммуноферментной тест-системы для проведения серологической диагностики HHV-7-инфекции.

Об авторах

Список литературы

Амелина Е.А., Арсеньева В.А., Марданлы С.С., Марданлы С.Г. Применение непрямого метода иммуноферментного анализа для выявления специфических IGM к вирусу герпеса человека 6 типа. Клиническая лабораторная диагностика. 2019; 64( 3): 158-63.

Даниленко Е.Д., Гончаров Д.Б., Казарян С.М., Марданлы С.Г., Асратян А.А. Частота инфицирования токсоплазмами женщин с акушерско-гинекологической патологией. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2008; 1: 11-3.

Малышев В.В., Сидорчик М.С., Марданлы С.Г. Эпидемиология, лабораторная диагностика и неврологические последствия герпесвирусной инфекции у взрослых. Вестник Российской военно-медицинской академии. 2018; 53: 145-6.

Марданлы С.Г., Авдонина А.С. Разработка набора реагентов для выявления антител класса G к отдельным антигенам вируса краснухи методом иммунного блоттинга в формате «WESTERN BLOT». Клиническая лабораторная диагностика. 2018; 63 (11): 696-701.

Марданлы С.Г., Авдонина А.С., Марданлы С.С., Шершнёва Н.Н. Разработка набора реагентов для выявления антител класса G к отдельным антигенам вирусов простого герпеса первого и второго типов методом иммунного блоттинга в формате Western-Line-Blot. Медицинский алфавит. 2017; 4 (38): 33-9.

Марданлы С.Г., Арсеньева В.А., Марданлы С.С., Ротанов С.В., Амелина Е.А. Синхронная детекция серологических маркёров основных герпесвирусных инфекций человека. Клиническая лабораторная диагностика. 2018; 63 (1): 35-40.

Марданлы С.Г. Герпесвирусные инфекции. Учебное пособие. Орехово-Зуево: Государственный гуманитарно-технологический университет; 2017.

Марданлы С.Г. К вопросу о стандартизации условий производства компонентов и постановки реакции иммунофлюоресценции на примере лабораторной диагностики сифилиса. Клиническая лабораторная диагностика. 2019; 64 (7): 409-12.

Марданлы С. Г. Состояние и перспективы развития отечественного рынка медицинских изделий для диагностики in vitro в сегменте диагностических реагентов и их наборов. Клиническая лабораторная диагностика. 2019; 64 (7): 443-8.

Марданлы С.С., Марданлы С.Г., Арсеньева В.А. Распространённость вируса герпеса человека среди контингентов различного возраста. Сборник «Перспективы внедрения инновационных технологий в медицине и фармации». Орехово-Зуево: Государственный гуманитарно-технологический университет; 2018; 128-36.

Марданлы С.Г., Первушин Ю.В., Иванова В.Н. Спинномозговая жидкость, лабораторные методы исследования и их клинико-диагностическое значение: учебное пособие. М.: Электрогорск; 2011.

Медицинская микробиология, вирусология и иммунология. Учебник. Т.2.Зверев В.В., Бойченко М.Н., ред. М.: ГЭОТАР-Медиа; 2016.

Миронов А. Ю. Основы клинической микробиологии и иммунологии. Воробьёв А.А., ред. М.: Изд-во «Первого МГМУ им. И.М. Сеченова»; 1997.

Никольский М.А. Вирус герпеса человека 7 типа. Инфекция и иммунитет. 2013; 3 (1): 15-20.

Black J.B., Schwarz T.F., Patton J.L., Kite-Powell K., Pellett P.E., Wiersbitzky S. et al. Evaluation of Immunoassays for Detection of Antibodies to Human Herpesvirus 7. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1996; 3 (1): 79-83.

Caserta M.T., Hall C.B., Schnabel K., Long C.E., D’Heron N. Primary human herpesvirus 7 infection: a comparison of human herpesvirus 7 and human herpesvirus 6 infections in children. J. Pediatr. 1998; 133: 386-9.

Clark D.A., Freeland M.L., Mackie M.L., Jarret R.F., Onions D.E. Prevalence of antibody to human herpesvirus 7 by age. J. Infect. Dis. 1993; 168: 251-2.

Epstein L.G., Shinnar S., Hesdorffer D.C., Nordli D.R., Hamidullah A., Benn K.T. et al. Human Herpesvirus 6 and 7 in febrile status epilepticus: The FEBSTAT study. Epilepsia. 2012; 53 (9): 1481-8.

Foa-Tomasi L., Fiorilli M.P., Avitabile E., Campadelli-Fiume G. Identification of a 85 kDa phosphoprotein as an immunodominant protein specific for human herpesvirus 7 infected cells. J. Gen. Virol. 1996; 77: 511-8.

Franti M., Aubin J.T., De Saunt-Maur G., Kosuge H., Yamanishi K., Gaytheret-Dejean A. et al. Immune reactivity of human sera to the glycoprotein B of Human Herpesvirus 7. J. Clin. Microb. 2002; 1 (40): 44-51.

Frenkel N., Schirmer E.C., Wyatt L.S., Katsafanas G., Roffman E., Danovich R.M, June. C.H. Isolation of a new herpesvirus from human CD4+ T cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1990; 87: 748-52.

Hall C.B., Caserta M.T., Schnabel K.C. Characteristics and acquisition of human herpesvirus (HHV) 7 infections in relation to infection with HHV-6. J. Infect. Dis. 2006; 193 (8): 1063-9.

Lusso P., Secchiero P., Crowley R.W., GarzinoDemo A., Berneman Z.N., Gallo R.C. CD4 is a critical component of the receptor for human herpesvirus 7: interference with human immunodeficiency virus. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994; 91: 3872-6.

Savolainen H., Lautenschlager I., Piiparinen H., Saarinen-Pihkala U., Hovi L., Vettenranta K. Human herpesvirus-6 and -7 in pediatric stem cell transplantation. Pediatr. Blood Cancer. 2005; 45: 820-5.

Stefan A., Secchiero P., Baechi T., Kempf W., Campadelli-Fiume G. The 85-Kilodalton phosphoprotein (pp85) of Human Herpesvirus 7 is encoded by open reafing frame U14 and localizes to a tegument substructure in virion particles. J. Virol. 1997; 71 (8): 5758-63.

Tanaka-Taya K., Kondo T., Nakagawa N., Inagi R., Miyoshi H., Sunagawa T. et al. Reactivation of human herpesvirus 6 by infection of human herpesvirus 7. J. Med. Virol. 2000; 60: 284-9.

Tong C.Y., Bakran A., Williams H., Cheung C.Y., Peiris J.S. Association of human herpesvirus 7 with cytomegalovirus disease in renal transplant recipients. Transplantation. 2000; 70: 213-6.

Torigoe S., Kumamoto T., Koide W., Taya K., Yamanishi K. Clinical manifestations associated with human herpesvirus 7 infection. Arch. Dis. Child. 1995; 72: 518-9.

Ward K.N., Couto Parada X., Passas J., Thiruchelvam A.D. Evaluation of specificity and sensitivity of indirect immunofluorescence tests for IgG to human herpesvirus-6 and -7. J. Virol. Meth. 2002; 106: 107-13.

Ключевые слова