РАЗРАБОТКА НАБОРА РЕАГЕНТОВ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ АНТИТЕЛ КЛАССА G К ОТДЕЛЬНЫМ АНТИГЕНАМ ВИРУСА КРАСНУХИ МЕТОДОМ ИММУННОГО БЛОТТИНГА В ФОРМАТЕ «WESTERN BLOT»
ISSN: 0869-2084 (Print) ISSN: 2412-1320 (Online)
Аннотация
Разработана отечественная тест-система для выявления антител класса G к отдельным антигенам вируса краснухи методом иммунного блоттинга в формате «Western Blot». Новая тест-система предназначена для проведения подтверждающих и дифференцирующих исследований в диагностике краснушной инфекций. Она имеет чувствительность и специфичность, не уступающие чувствительности и специфичности своего аналога — тест-системы «Anti-Rubella virus (IgG) WESTERNBLOT» («EUROIMMUN AG», Германия).
Об авторах
ЗАО «ЭКОлаб» 142530, г. Электрогорск, Московская область, Россия нач. научно-производственного отделения «ИППП», зам. нач. отдела перспективных разработок; e-mail: ekolab-avdonina@mail.ru ; https://orcid.org/0000-0002-2990-4930
Список литературы
Антонов В.С. Вопросы статистической оценки результатов клинических испытаний медицинских изделий для in vitro диагностики [Электронный ресурс]. — URL: https://www.ap-skld.ru/Risunki/Antonov.pdf (дата обращения: 30.10.2018)
Bouthry E., Furione M., Huzly D., Ogee-Nwankwo A., Hao L., Adebayo A., Icenogle J., Sarasini A., Grazia Revello M., Grangeot-Keros L., Vauloup-Fellousa Ch. Assessing Immunity to Rubella Virus: a Plea for Standardization of IgG (Immuno) assays. Journal of Clinical Microbiology. 2016; 54 (7): 1720-5.
Chaye H.A.H., Mauracher Ch.A., Tingle A.J., Gillam Sh. Cellular and Humoral Immune Responses to Rubella Virus Structural Proteins El, E2, and C. Journal of Clinical Microbiology. 1992; 30: 2323-9.
Clarke D.M., Loo T.W., Hui I. et al. Nucleotid sequence and in vitro expression of rubella virus 24S subgenomic mRNA encoding the structural proteins E1, E2 and C. Nucl. Ac. Res. 1987; 15: 1531-47.
Cusi M.G., Metelli R., Valensin P.E. Immune responses to wild and vaccine rubella viruses after rubella vaccination. Arch. Virol. 1989; 106: 63-72.
Cusi M.G., Rossolini G.M., Cellesi C., Valensin P.E. Antibody response to wild rubella virus structural proteins following immunization with RA 27/3 live attenuated vaccine. Archives of Virology. 1988; 101 (1-2): 25-33.
deMazancourt A., Waxham M.N., Nicolas J.C., Wolinsky Y.S. Antibody response to the rubella virus structural proteins in infants with the congenital rubella syndrome. J. Med. Virol. 1986; 79: 111-22.
Dimech W., Grangeot-Keros L., Vauloup-Fellousb Ch. Standardization of Assays That Detect Anti-Rubella Virus IgG Antibodies. Clinical Microbiology Reviews. 2016; 29 (1): 163-74.
Dorsett P.H., Miller D.C., Green K.Y., Byrd F.I. Structure and function of the rubella virus proteins. Rev. Infect. Dis. 1985; 7: 150-6.
Ho-Terry L., Cohen A. The role of glycosylation on hemagglutination and immunological reactivity of rubella virus. Arch. Virol. 1984; 79: 139-46.
Hornstein L., Levy U., Fogel A. Clinical rubella with virus transmission to the fetus in a pregnant woman considered to be immune. N. Engl. J. Med. 1988; 319: 1415-6.
Kalkkinen N., Oker-Blom K., Pettersson R.F. Three Genes Code for Rubella Virus Structural Proteins E1, E2a, E2b and C. J. Gen. Virol. 1984; 65: 1549-57.
Kangro H.O., Grint P.C.A., Hardiman A.E., Ho-Terry L., Terry G.M., Londesborough P. Abnormal antibody response against the rubella virus haemagglutinin. Serodiag. Immunother. Infect. Dis. 1989; 3: 161-5.
Katow S., Sugiura A. Antibody response to individual rubella virus proteins in congenital and other rubella virus infections. J. Clin. Microbiol. 1985; 21: 449-51.
Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 1970; 227: 680-5.
Mauracher C.A., Mitchell L.A., Shukin R., Tingle A.G. pH-dependent solubility shift of rubella virus capsid protein. Virology. 1991; 181: 773-7.
Mauracher C.A., Mitchell L.A., Tingle A.J. Differential IgG avidity to rubella virus structural proteins. Journal of Medical Virology. 1992; 36 (3): 202-8.
Meurman O. Detection of antiviral IgM antibodies and its problems (a review). Curr. Top. Microbiol. Immunol. 1983; 104:101-31.
Nedeljkovic J., Jovanovic T., Mladjenovic S., Hedman K., Peitsaro N., Oker-Blom Ch. Immunoblot analysis of natural and vaccine-induced IgG responses to rubella virus proteins expressed in insect cells. J. Clin. Virology. 1999; 14 (2): 119-31.
Oker-Blom C., Kalkkinen N., Kääriäinen L. et al. Rubella virus contains one capsid protein and three envelope glycoproteins, E1, E2a and E2b. J. Virol. 1983; 46: 964-73.
Petterson R.F., Oker-Blom C., Kalkkinen N., Kallio A., Ulmanen I., Kaariainen L., Partanen P., Vaheri A. Molecular and anti-genic characteristics and synthesis of rubella virus structural proteins. Rev. Infect. Dis. 1985; 7: 140-9.
Serdula M.K., Halstead S.B., Wiegenga N.H., Herrman K.L. Serological response to rubella revaccination. JAMA. 1984; 251: 1974-7.
Tingle A.J., Chantler J.K., Pot K.H., Paty D.W., Ford D.K. Post-partum rubella immunization: association with development of prolonged arthritis, neurological sequelae and chronic rubella viremii. J. Infect. Dis. 1985; 152: 606-12.
Wandinger K-P., Saschenbrecker S., Steinhagen K., Scheper Th., Meyer W., Bartelt U., Enders G. Diagnosis of recent primary rubella virus infections: Significance of glycoprotein-based IgM serology, IgG avidity and immunoblot analysis. Journal of Virological Methods. 2011; 174 (1-2): 85-93.
Waxham M.N., Wolinsky J.S. A model of the structural organization of rubella virions. Rev. Infect. Dis. 1985; 7: 133-9.
Williams L.L., Wolinsky J.S., Cao S.N., Shannon B.T., Leguire L.E. Antibody response to rubella virus antigen and structural proteins in retinitis pigmentosa. J. Infect. Dis. 1992; 166 (3): 525-30.
Wilson K.M., Di Camillo C., Doughty L., Dax E.M. Humoral Immune Response to Primary Rubella Virus Infection. Clinical and Vaccine Immunology. 2006; 13 (3): 380-6.