Список литературы
1. Frenkel N., Schirmer E. C., Wyatt L. S., Katsafanas G., Roffman E., Danovich R.M., June C.H. Isolation of a new herpesvirus from human CD4+ T cells. Proc. Natl. Acad. Sci. 1990; 8(7): 748–52.
2. Berneman Z.N., Ablashi D.V., Li G., Eger-Fletcher M., Reitz M.S., Jr Hung C.L., Brus I., Komaroff A.L., Gallo R.C. Human herpesvirus 7 is a T-lymphotropic virus and is related to, but significantly different
from, human herpesvirus 6 and human cytomegalovirus. Proc. Natl. Acad. Sci. 1992; 89: 10552–6.
3. Black J.B., Inoue N., Kite-Powell K., Zaki S., Pellett P.E. Frequent isolation of human herpesvirus 7 from saliva. Virus Res. 1993; 29: 91–8.
4. Lennette’s Laboratory Diagnosis of Viral Infections. Keith R.J., ed. University of Washington Fred Hutchinson Cancer Research Center Seattle, Washington, USA; 2010.
5. Mori Y., Yamanishi K. HHV-6A, 6B, and 7: pathogenesis, host response, and clinical disease. Human herpesviruses. Biology, therapy, and immunoprophylaxis. Arvin A., Campadelli-Fiume G., Mocarski E., Moore P.S., Roizman B., Whitley R., Yamanishi K., eds. Cambridge University Press. 2007; 843-2.
6. Hall C.B., Caserta M.T., Schnabel K.C., Boettrich C., McDermott M.P., Lofthus G.K., Carnahan J.A., Dewhurst S. Congenital infections with human herpesvirus 6 (HHV6) and human herpesvirus 7 (HHV7). J. Pediatr. 2004; 145: 472–7.
7. Kudesia G., Wreghitt T. Clinical and Diagnostic Virology. Cambridge university press; 2009.
8. Kempf W. Human herpesvirus 7 in dermatology: what role does it play? J. Clin. Dermatol. 2002; 3: 309–15.
9. Torigoe S., Koide W., Yamada M., Miyashiro E., Tanaka-Taya K., Yamanishi K. Human herpesvirus 7 infection associated with central nervous system manifestations. J. Pediatr. 1996; 129: 301–5.
10. Белова Е.Г., Кускова Т.К. Герпесвирусы 6, 7, 8-го типов. Медицинский научно-практический портал «Лечащий Врач» URL: https://www.lvrach.ru/2006/02/4533467/
11. Tanaka K., Kondo T., Torigoe S., Okada S., Mukai T., Yamanishi K. Human hepresvirus 7: another causal agent for roseola (exanthem subitum). J. Pediatr. 1994; 125: 1-5.
12. Stefan A., De Lillo M., Frascaroli G., Secchiero P., Neipel F., Campadelli-Fiume G. Development of recombinant diagnostic reagents based on pp85(U14) and p86(U11) proteins to detect the human immune response to human herpesvirus 7 infection. J. Clin. Microbiol. 1999; 37 (12): 3980-5.
13. Black J.B., Pellett P.E. Human herpesvirus 7. Rev. Med. Virol. 1999; 9: 245–62.
14. Black J.B., Schwarz T.F., Patton J.L., Kite-Powell K., Pellett P.E., Wiersbitzky S., Bruns R., Muller C., Jager G., Stewart J.A. Evaluation of immunoassays for detection of antibodies to human herpesvirus 7. Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1996; 3: 79–83.
15. Foa-Tomasi L., Avitabile E., Ke L., Campadelli-Fiume G. Polyvalent and monoclonal antibodies identify major immunogenic proteins specific for human herpesvirus 7-infected cells and have weak cross-reactivity with human herpesvirus. J. Gen. Virol. 1994; 75: 2719–27.
16. Nakagawa N., Mukai T., Sakamoto J. Antigenic analysis of human herpesvirus 7 (HHV-7) and HHV-6 using immune sera and monoclonal antibodies against HHV-7 . J. Gen. Virol. 1997; 78: 1131–7.
17. Wyatt L.S., Rodriguez W.J., Balachandran N., Frenkel N. Human herpesvirus 7: antigenic properties and prevalence in children and adults. J. Virol. 1991; 65: 6260–5.
18. Stefan A., Secchiero P., Baechi T., Kempf W., Campadelli-Fiume G. The 85-kilodalton phosphoprotein (pp85) of human herpesvirus 7 is encoded by open reading frame U14 and localizes to a tegument substructure in virion particles. J. Virol. 1997; 71: 5758–63.
19. Laemmli U.K. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 1970; 227: 680-5.
20. Марданлы С.С., Арсеньева В.А., Амелина Е.А., Марданлы С.Г. Иммуноферментная тест-система для диагностики герпесвирусной инфекции шестого типа. Медицинский алфавит. 2018;. 2 (35): 46-9.
21. Марданлы С.Г., Авдонина А.С. Разработка набора реагентов для выявления антител класса G к отдельным антигенам цитомегаловируса методом иммунного блоттинга в формате Western Blot. Клиническая дерматология и венерология. 2014; 1: 18-24.
22. Марданлы С.Г., Симонова Е.Г., Симонов В.В. Инфекции TоRCHгруппы: клиническая лабораторная диагностика, эпидемиологический надзор и контроль. Москва: Транзит-ИКС; 2018.
23. Авдонина А.С., Марданлы С.Г., Юминова Н.В. Разработка иммуноферментной тест-системы для выявления антител класса М к индивидуальным белкам цитомегаловируса человека методом
иммунного блоттинга в формате «Western blot» . Вестник современной клинической медицины. 2016; 9(5): 7-14.
24. Марданлы С.Г., Авдонина А.С. Разработка набора реагентов для выявления антител класса G к отдельным антигенам вируса краснухи методом иммунного блоттинга в формате «Western blot». Клиническая лабораторая диагностика. 2018; 63(11): 696-701.
25. Марданлы С.Г., Арсеньева В.А., Акиншина Ю.А., Амелина Е.А., Захаров М.В., Никитина А.В. Разработка нового набора реагентов для скрининговой диагностики с целью одновременного
обнаружения антител к каждому из основных возбудителей инфекций TORCH-группы методом линейного иммуноблоттинга. Эпидемиология и инфекционные болезни. Актуальные вопросы.
2014; 6: 24-9.
26. Марданлы С.С., Арсеньева В.А., Захаров М.В.. Марданлы С.Г, Амелина Е.А, Ротанов С.В. Применение линейного иммуноблоттинга для скрининга антител классов G и М к основным
возбудителям TORCH-инфекций. Эпидемиология и Вакцинопрофилактика. 2015; 3 (82): 59-65.
27. Марданлы С.Г., Арсеньева В.А., Марданлы С.С., Ротанов С.В., Амелина Е.А. Синхронная детекция серологических маркёров основных герпесвирусных инфекций человека. Клиническая лабораторная диагностика. 2018; 63(1): 35-40.
28. Марданлы С.Г., Авдонина А.С., Марданлы С.С., Шершнева Н.Н. Разработка набора реагентов для выявления антител класса G к отдельным антигенам вирусов простого герпеса первого и второго типов методом иммунного блоттинга в формате WesternLine-Blot. Медицинский алфавит. 2017; 4(38): 33-40.