Аннотация
В последние годы из-за широкого распространения карбапенемаз среди штаммов Klebsiella pneumoniae всё чаще назначается антибиотик группы резерва — колистин. Определение чувствительности к данному противомикробному препарату в повседневной практике имеет ряд сложностей в связи с катионными свойствами молекулы и плохой диффузией в агар. В связи с этим рекомендуется использовать эталонный метод микроразведений (ММР) в бульоне для определения минимальной подавляющей концентрации (МПК) колистина. Целью исследования являлось определение чувствительности к колистину выборки карбапенемрезистентных (карба-Р) штаммов K. pneumoniae, выделенных от пациентов трёх стационаров г. Москвы 2012-2016 г. г., методом микроразведений (ММР) и сравнение полученных данных с эпсилометрическим методом (Е-тест) и баканализатором VITEK 2 Compact. Доля резистентных изолятов (МПК>2 мг/л) составила 52%, 39%, 35% для указанных методов соответственно. Оба коммерческих метода продемонстрировали высокие уровни очень существенной ошибки (Very major error, VME): 26% для метода Е-тестов и 34% для VITEK 2 Compact. Значения категорийного и полного согласия (Categorical agreement, CA; Essential agreement, EA) не превысили 90%. Единичная существенная ошибка (Major error, ME) выявлена для VITEK 2 Compact. Результаты обоих коммерческих тестов для определения МПК колистина показали различия с результатами эталонного ММР. Клиническим лабораториям необходимо иметь в виду данные несоответствия и с осторожностью использовать Е-тесты и баканализатор VITEK 2 Compact при определении чувствительности к колистину.
Список литературы
Pitout J., Nordmann P., Poirel L. Carbapenemase-producing Klebsiella pneumoniae, a key pathogen set for global nosocomial dominance. Antimicrob Agents Chemother. 2015; 59: 5873-84
Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Склеенова Е.Ю., Иванчик Н.В., Тимохова А.В, Дехнич А.В., и др. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Enterobacteriaceae в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «МАРАФОН» в 2011-2012 гг. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2014; 16(4): 254-65.
Сухорукова М.В., Эйдельштейн М.В., Склеенова Е.Ю., Иванчик Н.В., Микотина А.В., Дехнич А.В., и др. Антибиотикорезистентность нозокомиальных штаммов Enterobacteriaceae в стационарах России: результаты многоцентрового эпидемиологического исследования «МАРАФОН» 2013-2014. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2017; 19(1): 49-56.
Суворова М.П., Белобородов В.Б., Яковлев С.В., Гаврилов М.М., Гришина Н.А., Дмитриева И.Б., и др. Нозокомиальные инфекции в педиатрических стационарах (исследование «ЭРГИНИ»). Вопросы практической педиатрии. 2016; 6: 8-16.
Morrissey I., Hackel M., Badal R., Bouchillon S., Hawser S., Biedenbach D. A Review of Ten Years of the Study for Monitoring Antimicrobial Resistance Trends (SMART) from 2002 to 2011. Pharmaceuticals. 2013; 6: 1335-46.
Molton J.S., Tambyah P.A., Brenda S.P. Ang., Ling M.L., Fisher D.A. The Global Spread of Healthcare-Associated Multidrug-Resistant Bacteria: A Perspective From Asia. Clinical Infect Diseases. 2013; 56: 1310-8.
Karaiskos I., Giamarellou H. Multidrug-resistant and extensively drug-resistant Gram-negative pathogens: current and emerging therapeutic approaches. Expert Opin Pharmacother. 2014; 15(10): 1351-70.
Данные с сайта Всемирной Организации Здравоохранения. Available at: https://apps.who.int/iris/bitstream/10665/112642/1/9789241564748_eng.pdf?ua=1 (дата обращения: июнь 2018 г.)
Tumbarello M., Trecarichi E.M., Giuseppe De Rosa F., Giannella M. Infections caused by KPC-producing Klebsiella pneumoniae: differences in therapy and mortality in a multicentre study. Antimicrob. Agents Chemother. 2015; 70: 2133-43
Агеевец В.А., Партина И.В., Лисицына Е.С. Чувствительность грамотрицательных бактерий, продуцентов карбапенемаз, к антибиотикам различных групп. Антибиотики и химиотерапия. 2013; 3-4: 10-3.
Крыжановская О.А., Лазарева А.В., Алябьева Н.М., Тепаев Р.Ф., Чеботарь И.В., Маянский Н.А. и др. Устойчивость к антибиотикам и молекулярные механизмы резистентности у карбапенем-нечувствительных изолятов Klebsiella pneumoniae, выделенных в педиатрических ОРИТ г. Москвы. Антибиотики и химиотерапия. 2016; 61: 7-8.
Poirel L., Jayol A., Nordmann P. Polymyxins: antibacterial activity, susceptibility testing, and resistance mechanisms encoded by plasmids or chromosomes. Clin. Microbiol. Rev. 2017; 30: 557-96.
Poudyal A., Howden B.P., Bell J.M., Gao W., Owen R.J., Turnidge J.D. et al. In vitro pharmacodynamics of colistin against multidrugresistant Klebsiella pneumoniae. J Antimicrob Chemother. 2008; 62: 1311-8.
Meletis G., Tzampaz E., Sianou E., Tzavaras I., Sofianou D. Colistin heteroresistance in carbapenemase-producing Klebsiella pneumoniae. J Antimicrob Chemother. 2011; 66: 946-7.
Данные с сайта Европейского комитета по тестированию чувствительности к антибиотикам. Available at: https://www.eucast.org/fileadmin/src/media/PDFs/EUCAST_files/General_documents/Recommendations_for_MIC_determination_of_colistin_March_2016.pdf. (дата обращения: июнь 2018 г.)
Данные с сайта Европейского комитета по тестированию чувствительности к антибиотикам. Available at: https://www.eucast.org/clinical_breakpoints. (дата обращения: июнь 2018 г.)
Данные с сайта управления по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов. Available at: https://www.fda.gov/medicaldevices/deviceregulationandguidance/guidancedocuments/ucm080564.htm. (дата обращения: июнь 2018 г.)
Chew K.L., La M-V., Lin R.T.P., Teo J.W.P. Colistin and polymyxin B susceptibility testing for carbapenem-resistant and mcr positive Enterobacteriaceae: comparison of Sensititre, MicroScan, Vitek 2, and Etest with broth microdilution. J. Clin. Microbiol. 2017; 55: 2609-16.
Rojas L.J., Salim M., Cober E. et al. Colistin resistance in carbapenem-resistant Klebsiella pneumoniae: laboratory detection and impact on mortality. Clin Infect Dis. 2017; 64: 711-8.
Dafopoulou K., Zarkotou O., Dimitroulia E., Hadjichristodoulou C., GennimataV., Pournaras S. et al. Comparative evaluation of colistin susceptibility testing methods among carbapenem-nonsusceptible Klebsiella pneumoniae and Acinetobacter baumannii clinical isolates. Antimicrob Agents Chemother. 2015. 59: 4625-30.
Vourli S., Dafopoulou K., Vrioni G., Tsakris A., Pournaras S. 2017. Evaluation of two automated systems for colistin susceptibility testing of carbapenem-resistant Acinetobacter baumannii clinical isolates. J. Antimicrob. Chemother. 2017; 72: 2528-30.
Hindler J.A., Humphries R.M. Colistin MIC Variability by Method for Contemporary Clinical Isolates of Multidrug-Resistant Gram-Negative Bacilli. J. Clin. Microbiol. 2013; 51:1678-84.
Landman D., Salamera J., Quale J. Irreproducible and uninterpretable polymyxin B MICs for Enterobacter cloacae and Enterobacter aerogenes. J. Clin. Microbiol. 2013; 51:4106-11.