Сравнительная характеристика методов выделения сперматозоидов из нативного эякулята мужчин
ISSN: 0869-2084 (Print) ISSN: 2412-1320 (Online)
Аннотация
Описаны методы выделения сперматозоидов из нативного эякулята: метод отмывания от семенной плазмы, метод всплытия «swim-up» и метод центрифугирования эякулята в градиенте плотности. Дается сравнительная характеристика эффективности методов, а также описаны их недостатки. Выбор метода зависит от того, проводится выделение половых клеток для исследовательских целей или для клинического использования, а также от характеристик эякулята и правил, предусмотренных в конкретной лаборатории.
Об авторах
ГБОУ ВПО «Астраханская государственная медицинская академия» Минздрава России 414000, Астрахань, Россия канд. биол. наук, проф., доцент каф. химии ploskonoz@mail.ru
Список литературы
Плосконос М.В. Методы выделения сперматозоидов из эякулятов мужчин. Журнал Национальной ассоциации ученых «Отечественная наука в эпоху изменений: постулаты прошлого и теории нового времени». 2015; (4 часть 6): 117-8.
Плосконос М.В. Применение эозина и йодистого пропидия для оценки жизнеспособности сперматозоидов человека. Клиническая лабораторная диагностика. 2014; 59 (11): 22-5.
Быкова М.В., Титова Н.М., Маркова Е.В., Светлаков А.В. Про/антиоксидантный статус в сперматозоидах и семенной плазме мужчин при патоспермии. Проблемы репродукции. 2008; (3): 63-7.
Долгов В.В., Луговская С.А., Фанченко Н.Д., Миронова И.И., Назарова Е.К., Ракова Н.Г. и др. Лабораторная диагностика мужского бесплодия. М.: Кафедра КЛД; 2006.
Плосконос М.В., Николаев А.А. «Абортивный» апоптоз сперматозоидов: какова его доля в эякуляте фертильного мужчины. Проблемы репродукции. 2014; 20 (6): 70-5.
Плосконос М.В. «Абортивный» апоптоз сперматозоидов фертильных мужчин. Международный журнал экспериментального образования. 2014; (3-2): 147.
Paasch U., Grunewald S., Dathe S., Glander H.J. Mitochondria of human spermatozoa are preferentially susceptible to apoptosis. Ann. N.Y. Acad. Sci. 2004; 1030: 403-9.
Lachaud С., Tesarik J., Canadas M.L., Mendoza C. Apoptosis and necrosis in human ejaculated spermatozoa. Hum. Reprod. 2004; 19 (3): 607-10.
Evenson D.P., Larson K.L., Jost L.K. Sperm chromatin structure assay: its clinical use for detecting sperm DNA fragmentation in male infertility and comparison with other technique. J. Androl. 2002; 23 (1): 25-43.
Плосконос М.В., Николаев А.А. Растворимая форма мембранного Fas-антигена (sFas-антигена) в норме и при патологии. Астраханский медицинский журнал. 2010; 5 (4): 20-7.
Плосконос М.В., Николаев А.А. Мембранная и растворимая форма FasL и активность матрилизина в репродуктивной системе мужчин. Астраханский медицинский журнал. 2011; 6 (3): 43-8.
Леонтьева О.А., Воробьева О.А. Сравнительный анализ морфологии сперматозоидов человека: нативный эякулят — прогрессивно подвижная фракция. Проблемы репродукции. 1999; (3): 29-36.
Zini A., Finelli A., Phang D., Jarvi K. Influence of semen processing technique on human sperm DNA integrity. Urology. 2000; 56 (6): 1081-4.
Younglai E.V., Holt D., Brown P., Jurisicova A., Casper R.F. Sperm swim-up techniques and DNA fragmentation. Hum. Reprod. 2001; 16 (9): 1950-3.
Almeida C., Cardoso M., Sousa M. Quantitative study of caspase-3 activity in semen and after swim-up preparation in relation to sperm quality. Hum. Reprod. 2005; 20 (5): 1307-13.
WHO laboratory manual for the examination of human sperm and semen-cervical mucus interaction. WHO , 4 ed. Cambridge: University Press; 1999.
Mortimer D. Sperm Preparation Methods. J. Androl. 2000; 21 (3): 357-66.
Sakkas D., Manicardi G.C., Tomlinson M. The use of two density gradient centrifugation techniques and the swim-up method to separate spermatozoa with chromatin and nuclear DNA anomalies. Hum. Reprod. 2000; 15 (5): 1112-6.
Gadella B.M., Harrison R.A. Capacitation induces cyclic adenosine 3’,5’-monophosphate-dependent, but apoptosis-unrelated, exposure of aminophospholipids at the apical head plasma membrane of boar sperm cells. Biol. Reprod. 2002; 67 (1): 340-50.
Boulton V.N., Braude P.R. Preparation of human spermatozoa for in vitro fertilisation by isopycnic centrifugation of self-generating density gradients. Arch. Androl. 1984; 13 (2-3): 167-76.
Morrell J.M., Sakkas D., Moffatt O., Manicardi G.C., Bizzaro D., Holmes P.V. Reduced senescence and retained chromatin integrity in human sperm prepared by density gradient centrifugation. J. Androl. 2001; Suppl (Abstr P5/6): 34.
Strehler E., Baccetti B., Sterzik K., Capitani S., Collodel G., De Santo M. et al. Detrimental effects of polyvinylpyrrolidone on the ultrastructure of spermatozoa (Notulae seminologicae 13). Hum. Reprod. 1998; 13 (1): 120-3.
Hlinka D., Herman M., Vesela J., Hredzak R., Horvath S., Pacin J. A modified method of intracytoplasmic sperm injection without the use of polyvinylpyrrolidone. Hum. Reprod. 1998; 13 (7): 1922-7.
Tsai M.Y., Huang F.J., Kung F.T., Lin Y.C., Chang S.Y., Wu J.F. et al. Influence of Polyvinylpyrrolidone on the outcome of intracytoplasmic sperm injection. J. Reprod. Med. 2000; 45 (2): 115-20.
Плосконос М.В., Николаев А.А. Влияние липополисахаридов Chlamydia trachomatis на апоптоз сперматозоидов и развитие мужского бесплодия. Урология. 2014; (1): 84-7.
Плосконос М.В. Экстернализация фосфатидилсерина на поверхность мембран сперматозоидов под действием оксидативного стресса. Российский иммунологический журнал. 2015; 9 (1 (1)): 156-7.
Aitken R.J., Baker M.A., Sawyer D. Oxidative stress in the male germ line and its role in the etiology of male infertility and genetic disease. Reprod. Biomed. Online. 2003; 7 (1): 65-70.
Prakash P., Leykin L., Chen Z., Toth T., Sergegh R., Schiff I. et al. Preparation by differential gradient centrifugation is better than swim-up in selecting sperm with normal morphology (strict criteria). Fertil. Steril. 1998; 69 (4): 722-6.
Tomlinson M.J., Moffatt O., Manicardi G.C., Bizzaro D., Afnan M., Sakkas D. Interrelationships between seminal parameters and sperm nuclear DNA damage before and after density gradient centrifugation: implications for assisted conception. Hum. Reprod. 2001; 16 (10): 2160-5.