Аннотация
Целью работы являлась оценка возможности использования универсального велюр-тампона на этапе забора биологического материала для ПЦР-диагностики коклюша. В исследование включено 87 больных в возрасте от 1 месяца до 37 лет, госпитализированных в ГБУЗ «ИКБ № 1 ДЗМ». У 68 (78,2 %) человек верифицирован диагноз «Коклюш», основную группу которых составили дети в возрасте от 1 до 12 месяцев (медиана 4 месяца); у 17 (19,5 %) — другие заболевания респираторного тракта; у 2 (2,3 %) — установлен контакт с больным коклюшем. Первичное обследование пациентов проводилось на 1 — 8-й неделях от начала заболевания. Материал от больных брали с интервалом в один день с задней стенки глотки коммерческими тампонами двух видов одной фирмы-производителя: зондом из полистирола с вискозным тампоном и велюр-тампоном на пластиковом аппликаторе, имеющим щеточку на конце. Выявление и дифференциацию специфических фрагментов генома возбудителей коклюша, паракоклюша и бронхисептикоза в биологическом материале осуществляли методом ПЦР в режиме реального времени с помощью набора реагентов «АмплиСенс® Bordetella multi-FL». Установлено, что эффективность ПЦР-исследования при использовании велюр-тампона на этапе забора биологического материала составила 83,8 %, а вискозного тампона — 82,3 %. Следовательно, применение универсального велюр-тампона на преаналитическом этапе повысило эффективность исследования на 1,5 %. Таким образом, при заборе биологического материала для ПЦР-диагностики коклюша наряду с вискозным зондом-тампоном, применение которого регламентировано СП 3.1.2.3162-14 «Профилактика коклюша», возможно использование универсального велюр-тампона.
Список литературы
Онищенко Г.Г. Эпидемиологическое благополучие населения России. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2013; 1: 42-51.
Паньков А.С., Денисюк Н.Б., Кайкова О.В. Эволюция коклюшной инфекции: вопросы профилактики. Медицинский альманах. 2015; 5(40): 129-132.
Петрова М.С., Попова О.П., Борисова О.Ю., Абрамова Е.Н., Вартанян Р.В., Келли Е.И. Коклюш у детей раннего возраста. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2012; 6: 12-24.
Попова О.П., Петрова М.С., Борисова О.Ю., Скирда Т.А., Грачева Н.М., Малышев Н.А. Клинические особенности коклюша у взрослых. Терапевтический архив. 2014; 86(11): 78-81.
Бабаченко И.В., Харит С.М., Курова Н.Н., Ценева Г.Я. Коклюш у детей. М.: Комментарий; 2014.
Гасилина Е.С., Китайчик С.М., Горелова И.А., Кабанова Н.П., Федосеева О.А., Богоявленская И.Ю. и др. Коклюш у детей — клинико-эпидемическая характеристика в Самарской области. Журнал инфектологии. 2018; 10(3): 54-60.
Егорова Т.В., Кулик М.С., Шангина И.А., Рожкова А.В., Кассихина С.А. Коклюш: старая проблема в современных условиях. Вятский Медицинский Вестник. 2015; 2(46): 44-7.
Гаврилова О.А., Астапов А.А., Шмелева Н.Д., Колодкина В.Л., Мартынов В.С. Вспышка коклюша среди привитых детей в организованном коллективе. Здравоохранение. 2017; 2: 75-80.
Медкова А.Ю., Аляпкина Ю.С., Синяшина Л.Н., Амелина И.П., Алексеев Я.И., Каратаев И.Г. и др. Распространенность стертых форм коклюша и анализ фазовых состояний бактерий Bordetella pertussis. Детские инфекции. 2010; 9(4): 19-22.
Skoff T.H., Kenyon C., Cocoros N., Liko J., Miller L., Kudish K. at al. Sources of infant pertussis infection in the United States. Pediatrics. 2015; 136(4): 635-41
Борисов А.С., Цуканова Е.С., Гурович О.В., Пухова Е.В., Степанищева Н.А., Мешкова Ю.В. и др. Коклюш и паракоклюш в современной практике участкового педиатра. Вестник научных конференций. 2017; 1-1(17): 34-6
Houard S., Hackel C., Herzog A., Bollen A. Specific identification of Bordetella pertussis by the polymerase chain reaction. Research in Microbiology. 1989; 140(7): 477-87.
Glare E.M., Paton J.P., Premier R.R., Lawrence A.J., Nisbet I.T. Analysis of a repetitive DNA sequence from Bordetella pertussis and its application to the diagnosis of pertussis using the polymerase chain reaction. Journal of Clinical Microbiology. 1990; 28(9): 1982-7.
Birkebaek N.H., Heron I., Skjodt K. Bordetella pertussis diagnosed by polymerase chain reaction. APMIS. 1994; 102(4): 291 -4.
Schlapfer G., Cherry J.D., Heininger U., Uberal M., Schmitt-Grohe S., Laussucq S. Polymerase chain reaction identification of Bordetella pertussis infections in vaccinees and family members in a pertussis vaccine efficacy trial in Germany. The Pediatric Infectious Disease Journal. 1995; 14(3): 209-14.
Прадед М.Н., Яцышина С.Б., Селезнева Т.С., Малинина С.В., Бирюлева Н.В., Любимова Т.Е. и др. ПЦР-диагностика инфекций, вызванных B.pertussis, B.parapertussis и B.bronchiseptica. Клиническая лабораторная диагностика. 2013; 1: 53-6
Kamachi K., Yoshino S., Katsukawa C., Otsuka N., Hiramatsu Y., Shibayama K. Laboratory-based surveillance of pertussis using multitarget real-time PCR in Japan: evidence for Bordetella pertussis infection in preteens and teens. New Microbes and New Infections. 2015; 8: 70-4.
Martini H. Detemmerman L., Soetens O., Yusuf E., Pierard D. Improving specificity of Bordetella pertussis detection using a four target real-time PCR. PLoS One. 2017; 12(4): e0175587.
Probst A., Facius R., Wirth R., Moissl-Eichinger C. Validation of a nylon-flocked-swab protocol for efficient recovery of bacterial spores from smooth and rough surfaces. Applied and Environmental Microbiology. 2010; 76(15): 5148-58.
Finazzi G., Losio M.N., Varisco G. FLOQSwab™: optimisation of procedures for the recovery of microbiological samples from surfaces. Italian Journal of Food Safety. 2016; 5(3): 121-3.