СОВРЕМЕННЫЕ ПОДХОДЫ К ТРАНСПОРТИРОВКЕ БИООБРАЗЦОВ ПРИ НИЗКИХ ТЕМПЕРАТУРАХ

ISSN: 0869-2084 (Print) ISSN: 2412-1320 (Online)

Посмотреть или загрузить статью

Читать

Аннотация Об авторах Список литературы Ключ. слова

Аннотация

Для получения биологических образцов высокого качества в процессе биобанкирования для дальнейшего использования в научно-исследовательской работе, в лабораторных исследованиях необходимо учитывать влияние способа транспортировки на их сохранность. Рассмотрено влияние жидкого азота, сухого льда, аккумуляторов холода на биологические показатели, даны рекомендации для уменьшения влияния способов замораживания и хранения на качество биообразцов. Жидкий азот обеспечивает наилучшую сохранность образцов, однако, при их транспортировке сухой лёд используется гораздо чаще. При транспортировке некоторых типов клеток при помощи сухого льда необходимо использовать криопротекторы CryoStor CS1, Cell Banker 1. Сухой лёд может оказывать влияние как на pH жидких биообразцов, так и на коагулогические показатели плазмы крови. Проникновение СО2 в образец ведёт к изменению показателей ПТВ и АЧТВ, к снижению уровня протеина C и фибриногена при определённых условиях. Во избежание изменения коагулогических параметров образцы сыворотки и плазмы крови, подвергнутые воздействию сухого льда более 16 часов, должны быть разморожены открытыми при комнатной температуре, либо находиться при температуре -80° C в течение 24 ч. Применение аккумуляторов холода недопустимо для длительной транспортировки сыворотки и плазмы крови, содержащих нестабильные биомаркёры, из-за недостаточно низкой температуры (повышение с течением времени до -25º С и выше). В качестве аккумуляторов холода низких температур (до -80º С) могут использоваться металлические гранулы, но они не являются настолько же эффективными, как сухой лёд, т. к. он способен удерживать требуемую температуру гораздо дольше.

Об авторах

Козлова Виктория Александровна

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр терапии и профилактической медицины» Минздрава РФ 101990, Москва, Россия лаборант-исследователь лаборатории «Банк биологического материала» vkozlova2905@gmail.com

Список литературы

Сивакова О.В., Покровская М.С., Ефимова И.А., Мешков А.Н., Метельская В.А., Драпкина О.М. Контроль качества образцов сыворотки и плазмы крови для научных исследований. Профилактическая медицина. 2019; 22(5): 91-7

Hmel P. J., Kennedy A., Quiles J. G., Gorogias M., Seelbaugh J. P., Morrissette C. R et al. Physical and Thermal Properties of Blood Storage Bags: Implications for Shipping Frozen Components on Dry. Transfusion. 2002; 42(7): 836-46.

Kofanova O., Davis K., Glazer B., De Souza Y., Kessler J., Betsou F. Viable Mononuclear Cell Stability Study for Implementation in a Proficiency Testing Program: Impact of Shipment Conditions. Biopreservation and Biobanking. 2014; 12(3): 206-16.

Raspa M., Guan M., Paoletti R., Montoliu L., Ayadi A., Marschall A. Dry ice is a reliable substrate for the distribution of frozen mouse spermatozoa: A multi-centric study. Theriogenology. 2017; 96: 49-57.

Сайт: Компания ВебПак — URL: https://webpack.ru/ (дата обращения 27.04.2020).

Сайт: Википедия/Жидкий азот — URL: https://ru.wikipedia.org/wiki/Жидкий_азот (дата обращения 20.04.2020).

Сайт: Институт регенеративной медицины МГУ — URL: https://irm.msu.ru/subdivisions/cryobank/ (дата обращения 1.05.2020).

Stacey G. N., Day J. G. Putting cells to sleep for future science. Nature biotechnology. 2014; 32(4): 320-2.

Mazur P. Cryobiology: the freezing of biological systems. Science. 1970; 168: 939-949.

Dluska E., Metera A., Markowska-Radomska A., Tudek A. Effective Cryopreservation and Recovery of Living Cells Encapsulated in Multiple Emulsions. Biopreservation and Biobanking. 2019; 17(5): 468-76.

Klebe R. J., Mancuso M. G. Identification of New Cryoprotective Agents for Cultured Mammalian Cells. In Vitro. 1983; 19: 167-70.

Сайт: Центр Репродукции и Генетики — URL: https://www.fertimed.ru/ (дата обращения 15.04.2020)

Amesse L., Srivastava G., Uddin D., Pfaff-Amesse T. Comparison of Cryopreserved Sperm in Vaporous and Liquid Nitrogen. The Journal of reproductive medicine. 2003; 48(5): 319 — 24.

Amstislavsky S. Y., Trukshin I. S. Cryobanking mammalian embryos: priorities and the optimal choice of reproductive technologies. Russian journal of developmental biology. 2010; 41(1): 13-23.

Riggs R., Mayer J., Dowling-Lacey D., Chi T.-F., Jones, E., Oehninger, S. Does storage time influence postthaw survival and pregnancy outcome? An analysis of 11,768 cryopreserved human embryos. Fertility and Sterility. 2010; 93(1): 109-15.

Нестерова С.В., Яшина С.Г. Криоконсервация семян некоторых редких и декоративных растений флоры Дальнего Востока. Биофизика живой клетки. Криоконсервация генетических ресурсов в проблеме сохранения биоразнообразия. 1994; 6: 91-3.

Сайт: Гемабанк — URL: https://gemabank.ru/ (дата обращения 10.05.2020).

Kilbride P., Gonzalez-Molina J., Maurmann N., Mendonça da Silva J., Gibbons S., Selden C., et al. Impact of Storage at -80 ºC on Encapsulated Liver Spheroids After Liquid Nitrogen Storage. BioResearch Open Access. 2016; 5(1): 146-54.

Miyamoto Y., Ikeuchi M., Noguchi H., Hayashi S. Long-term Cryopreservation of Human and other Mammalian Cells at -80 °C for 8 Years. Cell Medicine. 2018; 10: 1-7.

Alesci S., Borggrefe M., Dempfle C.-E. Effect of freezing method and storage at — 20 °C and — 70 °C on prothrombin time, aPTT and plasma fibrinogen levels. Thrombosis Research. 2009; 124(1): 121-6.

Cайт: Компания Elme Messer — URL: https://www.elmemesser.ru/ (дата обращения 15.05.2020)

Murphy B.M., Swarts S., Mueller B.M., Geer P., Manning M.C., Fitchmun M.I. Protein instability following transport or storage on dry ice. Nature Methods. 2013; 10(4): 278-9.

Odsæter I. H., Lian I. A., Bratberg K., Mikkelsen G. Dry Ice Exposure of Plasma Samples Influences pH and Lupus Anticoagulant Analysis. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 2015, 53(5): 809 — 13.

Rist M. J. Influence of freezing and storage procedure on human urine samples in NMR-based metabolomics. Metabolites. 2013; 3(2): 243-58.

Trondsetås L. M., Lian G., Alsos I. The effects of dry ice exposure on plasma pH and coagulation analyses. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 2017; 57(1): 59-64.

Gosselin R. C., Honeychurch K., Kang H. J., Dwyre, D. M. (2015). Effects of storage and thawing conditions on coagulation testing. International Journal of Laboratory Hematology. 2015; 37(4): 551-9.

Chaimoff C., Creter D., Djaldetti M. The effect of pH on platelet and coagulation factor activities. American Journal of Surgery. 1978; 136(2): 257-9.

Сайт: Термоконтенер.ру — URL: https://www.termokonteiner.ru/ (дата обращения 10.05.2020).

Сайт: Термологика — URL: https://termologika.ru/ (дата обращения 10.05.2020).

Ismalaj T., Sackett, D. L. An inexpensive replacement for dry ice in the laboratory. Analytical Biochemistry. 2015; 474(1): 38-9

Ключевые слова

#биобанкирование #биологические образцы #жидкий азот #контроль качества #криоконсервация #преаналитические переменные #сухой лёд #транспортировка биообразцов